Возбудитель гемофилёзной плевропневмонии свиней

Антисы воротки, полученные против различных серовариантов

культур, накодящикся в М-форме, обладают в пробирочной реакции агглютинации высокой специфичностью, И ЭТО позволяет использовать реакцию агглютинации для типизации штаммов возбудителя.

Кроме реакции агглютинации, типовые антигены могут быть дифференцированы в реакции связывания комплемента, реакции иммунофлуоресценции или с фенол-водным экстрактом в РДП. РСК является менее специфической по сравнению с РА при использовании как корпускулярных антигенов, так и растворимого фенол-водного антигена. В первом случае это, видимо, объясняется растворением капсульной субстанции в коде проведения РСК и участием в реакции общин антигенов. Меньшую специфичность экстрагированного антигена в РСК, чем в РДП, можно объяснить также большей чувствительностью РСК.

Структура соматических антигенов Н. pleuropneumoniae практически  не изучена.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

9. Бактериологическая диагностика.

 

Для исследования направляют кусочки поражённых лёгких, средостенные и бронхиальные лимфатические узлы в термосе со льдом. Из материала готовят мазки- отпечатки, окрашивают по Грамму и Гинсу и микроскопируют. Параллельно делают посев на предварительно подсушенный кровяной МПА в чашках. Чашки выдерживают в термостате в течений 24 часов, затем изучают характер роста.

Возбудителя плевропневмонии дифференцируют от возбудителя гемофилёзного серозита. В отличие от H. parasuis возбудитель плевропневмонии обладает гемолитической и уреазной активностью, образует сателлитные колонии на МПА с «баккормилкой», в МПА и на МПБ без «баккормилки» не растёт.

Патагенность выделенной культуры определяют на белых мышах  при внутрибрюшинном заражении.

Для бактериологического  исследования берут экссудат из перитональной, плевральной и перикардиальных  полостей, а так же соскобы с  поражённых серозных оболочек в стирильные флаконы не позднее 4…6 ч с момента гибели животного.

Патматериал в термосе  со льдом отправляют с нарочным. В лаборатории мазки-отпечатки  после окраски по Грамму и Гинсу микроскопируют, параллельно делают посевы на кровяной МПА и шоколадный агар. Определяют патагенность выделенной культуры на морских свинках. Колонии, выросшие на шеколадном агаре, суспендирую в стерильно физиологическом растворе до 20 ед. мутности. Суспензию в дозе 1мл вводят внутрибрюшинно трём морским свинкам. Наблюдение ведут в течение пяти дней. Культуру признают патогенной в случает гибели одной морской свинки или более и выделения от них одной исходной культуры.

Патологоанатомические изменения. При наружном осмотре  трупов обнаруживают багрово-синее  окрашивание кожи ушей, рыла, подчелюстного пространства, живота, промежностей, кожи вокруг ануса, хвоста, передних конечностей.  
При вскрытии павших поросят в грудной полости, сердечной сорочке, в брюшной полости находят большое количество серозного экссудата соломенно-желтого цвета с примесью хлопьев фибрина, количество которого в грудной полости может достигать до 150 мл, в сердечной сорочке до 70 мл и в брюшной полости до 370 мл. В грудной и брюшной полостях наблюдаются отложения фибрилл.

Материал для лабораторного исследования берут не позднее 4 – 6 часов после смерти от 2-3 трупов поросят, павших с признаками острого полисерозита и не подвергавшихся антибиотикотерапии. Для этого после вскрытия, предварительно обработанные дезинфицирующим раствором поверхности кожи в области разреза грудной и брюшной полостей, стерильным шприцом или пастеровской пипеткой набирают экссудат из перитонеальной, плевральной, перикардиальной полостей и переносят в одну стерильную пробирку или флакон. Туда же вносят соскобы фибрина, сделанные стерильным скальпелем с поверхности пораженных серозных оболочек и закрывают резиновой пробкой. При наличии признаков поражения центральной нервной системы берут мозговую ткань и содержимое мозговых желудков. Из пораженных суставов стерильным шприцом отбирают синовиальную жидкость. От каждого животного патологический материал помещают в отдельную пробирку, маркируют и в термосе со льдом отправляют в ветеринарную лабораторию.

 

 

 

Схема лабораторной диагностики гемофилёзной плевропневмонии  свиней.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 Серологическая  диагностика.

 

В серологических реакциях с корпускулярными антигенами различают 15 серотипов. Наиболее часто при  острых вспышках заболевания выделяют 1, 5, 10, 12, 13, 14 серовары.

В последние годы на территории РФ среди свиней отмечен рост заболеваемости по гемофилезному полисерозиту. Только за 2006г по этой причине пало более 16 тысяч свиней. Заражение происходит в основном аэрогенным путем. Отмечено, что быстрее инфекция распространяется в осеннее - зимний период. Гемофилезный полисерозит может проявляться, как самостоятельное заболевание в различных формах и как вторичная инфекция. Переболевшие животные могут длительное время оставаться носителями и выделителями гемофильных бактерий. Отсутствие надежных и апробированных методов прижизненного выявления животных-бактерионосителей оставляет вероятность попадания возбудителя в стадо.

Методы и результаты серологической идентификации культур H.parasuis. Использовали кроличьи гипериммунные сыворотки против типовых штаммов сероваров А, В, С, Д. 
 Дифференциация сероваров H.parasuis в минзурочной РА показала её малую специфика. Более действенной для указанной цели оказалась РСК с растворимыми антигенами. Исследование в РСК с типовыми сыворотками 46 эпизоотических культур H.parasuis, выделенных при генерализованных серозитах, позволило 47,82% культур отнести к известным сероварам Бакоса. Штаммы серовара А составили 15,2%, В - 17,39%, С - 2,17%, Д-13,04%. В группе штаммов, выделенных из лёгких при пневмониях (18шт), культуры серовара А составили 16,6%, В - 11,1%, С - 5,56%, Д -33,3%, нетипируемые -33,3%. В числе культур, выделенных из носовой слизи клинически здоровых свиней (14 шт.), 35,7% отнесены к серовару А, 14,2% -- к серовару Д, не удалось типировать 50% штаммов. 
 В целом по всей группе из 78 штаммов H.parasuis было отнесено к серовару А - 19,23%, В - 12,82%, С - 2,56%, Д - 17,95%, нетипируемые культуры составили 47,44%. Исследование нетипируемых культур в РСК свиноводства атисыворотками против изоляторов данной же категории показало наличие ещё трёх серологических вариантов и часть культур осталась за пределами этих групп. Полученные данные позволяют заключить, что нужно расширение числа сероваров на базе схемы Бакоса, или требуется создание новой схемы серовариантной дифференциации с новенькими типовыми штаммами. Анализ серотиповой структуры культур, выделенных в границах одного хозяйства показал ассоциацию с генерализованными серозитами свиней H.parasuis различной серовариантной принадлежности.

Методы и результаты серологической идентификации культур A.pleuropneumoniae. 
 Для серовариантной дифференциации культур A.pleuropneumoniae испытывали РА пробирочную, РА с 2-МЭ, РА на стекле, РНГА, РНГА с 2-МЭ, РКА минзурочную на стекле, двухступенчатую РИФ. При внутривидовой дифференциации в различных серологических реакциях типовых культур A.pleuropneumoniae (серовары 1,2,3,4,5,6,7,8, 10,12) установлены перекрёстные реакции меж сероварами 3,6 и 8, 2 и 3, 1 и 2, 4 и 7. Исследование обоесторонних антигенных связей в большинстве случаев дозволяет найти серовариантную принадлежность культур. Из группы ускоренных серологических реакций для серологической идентификации наиболее перспективна РКА с растворимыми антигенами.  
 При серологической идентификации 82 эпизоотических НАД--зависимых культур микробов, выделенных при фиброзно-геморрагических пневмониях свиней и классифицированных как A.pleuropneumoniae отнесены к серовару 2 -12,9%, 3 -14,53%, 4 -8,53%, 6 -3,65%, микробам «малой группы» -7,31%. Большую группу штаммов серологически идентифицировать не удалось. Культуры последней группы имели антигенное родство с сероварами 3,6,8,10, но при исследовании в перекрёстной РА с адсорбцией были не схожи им.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

10. Специфическая профилактика.

 

Специфическая профилактика возбудителя гемофилёзной плевропневмонии

изучена слабо. Используют ГОА-формолвакцину. Вакцинируют супоростных свиноматок для создания колострального иммунитета. Для лечения используют антибиотики, сульфаниламидные препараты, нитрофураны в рекомендуемых дозах.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Заключение

 

 

Возбудитель гемофилёзной плевропневмонии мало изучен, имеет  много

серовариантов, что затрудняет диагностику. Мало разработана специфическая

профилактика, вакцины не обеспечивают полной защиты органов дыхания. Инактивированны е вакцины нуждаются в дальнейшем совершенствовании. Целесообразно в связи со слабой иммуногенностью инактивированных вакцин вести работы по созданию живых вакцин. Нужно также разрабатывать специфическую терапию.

Экономический ущерб от плевропневмонии может  быть значительным. Он слагается из большой смертности, снижение темпов роста больных животных, что увеличивает затраты на кормление, а также из больших затрат на лечебно-профилактические мероприятия.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Список литературы

 

1. Бакулов И.А. Эпизоотология с микробиологией Москва: "Агропромиздат", 1987. Стр.  415.

2. Инфекционные болезни  животных / Б.Ф. Бессарабов, Е.С. Воронин  и др.; Под ред. А.А. Сидорчука. -- М.: КолосС, 2007. Стр. 671 с

3. Алтухов Н.Н. Краткий  справочник ветеринарного врача Москва: "Агропромиздат", 1990. Стр. 574

4. http://www.referat-web.ru

5. Справочник ветеринарного  врача/ А.Ф. Кузнецов. - Москва: «Лань», 2002. Стр. 896

6. Справочник ветеринарного  врача/ П.П. Достоевский, Н.А.  Судаков, В.А. Атамась и др. - К.: Урожай, 1990. Стр. 784с.

7. Инфекционные болезни  животных/Б. Ф. Бессарабов, А. А.  Вашутин, Е. С. Воронин и др. под редакцией А. А. Сидорчука  – М.: КолосС, 2007. Стр.114 – 117

8.  Лабораторные исследования  в ветеринарии. Справочник. Бактериальные  инфекции/М.: Агропромиздат, 1986. Стр. 320

9.  http://www.medicina.ru

10.http://www.wikipedia.ru

11. Ветеринарный энциклопедический  словарь/ М.: 1981. Стр. 110 – 114

12. http://www.BiblioFond.ru

13. http://www.uchitsya-prosto.ru

14.  http://www.CoolReferat.ru

15. http://www.zachetka.ru