Исскуственное обеспложивание самок путем оперативного удаления половых желез

План курсовой работы

1. Название операции и определение её, историческая справка об этой операции – стр. 2.
2. Цель операции, её экономическая эффективность – стр. 3.
3. Общие сведения о животном – стр. 4.
4. Фиксация животного. Место проведения операции – стр. 6.
5. Операционные доступы (при полостных операциях) – стр. 6.
6. Анатомо-топографические данные – стр. 9.
7. Инструменты, перевязочный материал, медикаменты

– стр. 12.

8. Профилактика хирургических осложнений – стр. 13.
9. Обезболивание – стр. 19.

   10. Техника проведения операции – стр. 21.

   11. Возможные осложнения, их предупреждение и устранение  

          – стр. 24.

12. Послеоперационный уход за животным – стр. 29.
13. Заключение (эпикриз, обсуждение, обобщение, выводы) – стр. 30.
14. Использованная литература – стр. 32.
15. Дата и подпись.

    Название операции и определение её,

историческая  справка об этой операции.

Название операции – кастрация самок – овариоэктомия (ovariectomia).

      Кастрация (лат. castration – оскопление, обеспложивание) самок (ovariectomia - от лат. ovarium – яичник; ectomia – удаление, иссечение) - искусственное обеспложивание самок путём оперативного удаления половых желёз (яичников).

    В большинстве  развитых западных стран кастрированные  животные составляют около 50%.

    Во многих литературных источниках указано, что изолированная овариоэктомия обычно не рекомендуется, поскольку считается целесообразным проведение овариогистерэктомии (распространена в США), однако удаление яичников достаточно и для стерилизации, и для предупреждения развития пиометры. Есть сведения, что при удалении одних только яичников, потенциальным источником заболевания может стать матка. Овариоэктомия  широко практикуется в континентальной Европе.

    В отечественной  ветеринарной практике под понятием  «стерилизация» часто понимают именно овариоэктомию. Этот вариант хирургической стерилизации самый желательный, но пригоден только для молодых и нерожавших особей.

     Что касается оптимального возраста для кастрации кошек, то её лучше проводить в возрасте от 7 недель до 6,5 месяцев. Но большинство ветеринарных врачей предлагают оперировать животных позже, когда они достигают возраста 6-12 месяцев.

Цель операции,

её экономическая эффективность.

Показания к  овариоэктомии.

Факультативные показания:                                                                              - предотвращение нежелательной беременности;                                          - предотвращение нежелательного поведения, связанного с течкой;           - предупреждение развития опухолей молочных желёз.

Терапевтические показания:

- патология  яичников;

-стабилизация состояния  при сахарном диабете;

- предупреждение развития  клинических признаков ложной  беременности.

     Стерилизация кошек часто выполняется по просьбе владельца (как и в моём случае), чтобы избежать проблемы, связанной с их поведенческой реакцией в период половой зрелости (в среднем наступает в возрасте 8 месяцев). Стерилизация – единственный гуманный выход для тех хозяев, которые в силу тех или иных обстоятельств не могут разводить котят. Таким образом, кастрацию кошки можно рассматривать как один из элементов содержания и эксплуатации животного.                            

     Плановая овариоэктомия не проводится на стадии  эструса в связи с повышенной васкуляризацией и отёчностью  органов репродуктивной системы. Но, к сожалению, в связи с особенностями цикла у кошек это требование часто нарушается.

Общие сведения о животном.

1. Вид животного – кошка;

2. Пол – кошка;

3. Возраст – 1 год;

4. Кличка – Василиса;

5. Масса тела – 3 кг;

6. Владелец животного – Попова Зинаида Викторовна;

7. Адрес владельца – Тверская область г. калязин ул. Октябрьская

   д. 64

Anamnesis vitae (со слов хозяйки).

     Кошка содержится в частном доме, имеет свободный доступ на улицу.

Хозяйка осуществляет уход за кошкой: периодически моет, расчёсывает; следит за состоянием здоровья, проводит дегельминтизацию, витаминизацию, обработку против эктопаразитов. Кошка привита против бешенства; панлейкопении, ринотрахеита, калицивируса и хламидий кошек.

     Кормление 3-4 раза в день.

Корма, которые предпочитает кошка: мясо и субпродукты, рыба, суп, молочные каши, молоко, творог, яйца.

Животное регулярно  обеспечивается водой.

     Для благоприятного исхода операции важное значение имеет подготовка животного, в частности, направленная на стимуляцию факторов естественной резистентности организма животного.

     Необходимо провести клиническое обследование с учётом анамнеза, возраста, упитанности; исключить заболевания, особенно инфекционной этиологии. Нельзя проводить операцию у животных с повышенной температурой, у истощённых животных.

     За 4 дня до операции (плановая операция назначена на 10 августа 2010 года) животное было на приёме в СББЖ.

Данные клинического исследования (6 августа 2010 года):

- температура тела – 38,7ºС;

- пульс – 123 уд./мин;

- частота дыхания – 15 уд./мин.

     Положение тела в пространстве – естественное;

упитанность – хорошая; темперамент  – уравновешенный, спокойный.

     Общее состояние – животное бодрое; реакция на раздражители окружающей среды – выражена.

     Аускультацией в области сердца выявлено правильное чередование сердечных тонов и пауз между ними; сердечных шумов не выявлено.

     При аускультации грудной клетки прослушивается  везикулярное дыхание.

     Отсутствие или снижение аппетита не выявлено; рвота отсутствует, дефекация и мочеотделение нормальная.

     Течка отсутствует.

При проведении предоперационной подготовки кошке с целью стимуляции факторов естественной  резистентности организма:

- однократно подкожно введён иммуномодулятор «Риботан» в дозе 1,5 мл;

- подкожно в течение 3 дней вводится витаминный препарат «Витам» в дозе 2 мл.

     В день проведения операции (10 августа) животное клинически осмотрено – нарушений не выявлено (клинически здорово).

Проведена термометрия (38,7ºС);  измерение пульса (120 уд./мин) и частоты дыхания (15 уд./мин.)

Фиксация животного.

Место проведения операции.

     Место проведения операции – операционный кабинет при СББЖ.

В зависимости от техники проведения операции (что чаще всего определяется личными предпочтениями хирурга) животному придаётся спинное (желательно с приподнятым тазом) или боковое положение.

     При проведении фиксации я учитываю, что способы фиксации преследуют три основные цели:

- придать животному такое положение, при котором можно обеспечить свободный доступ к оперируемой области;

- ограничить защитные  движения животного и обеспечить  тем самым условия для безопасного  проведения манипуляций;

- обеспечить нормальное  функционирование организма.

     Я собираюсь проводить овариоэктомию по белой линии живота, поэтому животному на операционном столе придаётся спинное положение с укреплением конечностей при помощи тесёмок.

Оперативные доступы.

     Оперативный доступ должен быть рациональным, чтобы при минимальном повреждении тканей производимый разрез обеспечивал наилучшие условия обозрения для необходимых действий на органе.

     Основное условия при разъединении тканей – бережное к ним отношение, чтобы исключить серьёзные нарушения жизнедеятельности организма в целом; это обязывает хирурга мыслить физиологически, а оперировать анатомически.

Разъединение тканей лучше делать по ходу кожных складок, мышечных соединительнотканных волокон, обеспечивая наименьшее зияние раны; избегая повреждения близлежащих крупных сосудов, нервов, протоков желёз.

     Необходимо не только обеспечить доступ к нужному участку тела,

но и создать благоприятные  условия для заживления.

     Величина разреза определяется размером органа, глубиной его расположения, проведением манипуляций в оперируемой области.

При разрезах необходимо придерживаться послойного разъединения тканей и выполнять его одномоментно. При учёте длины разреза необходимо учитывать правило: разрез подлежащих тканей должен быть на 0,5 – 1 см короче предыдущего, потому что такая последовательность рассечения тканей обеспечивает свободный отток раневого экссудата и хорошую кооптацию краёв раны, а также визуальный контроль наложения швов.

Овариоэктомия кошек  проводится двумя способами:

- овариоэктомия через разрез вентральной брюшной стенки (медианный, или парамедианный разрезы);

- овариоэктомия через  разрез боковой брюшной стенки (через подвздох).

    Т.к. овариоэктомия является полостной операцией, ведущее значение придаётся лапаротомии.

     ЛАПАРОТОМИЯ (laparotomia) – вскрытие брюшной полости для доступа к расположенным в ней органам; метод послойного разъединения кожи с подкожной клетчаткой и тканей белой линии до брюшины. Брюшину захватывают (фиксируют) пинцетом в складку и осторожно рассекают скальпелем. Полученный разрез увеличивают ножницами под контролем пальца, введённого в брюшную полость.

     Лапаротомия может осуществляться по белой линии живота (медианный, или срединный) разрез или параллельно белой линии живота (парамедианный), отступив от неё на 1-2 см в сторону. Животное фиксируют в спинном положении.

Отыскивают и ампутируют яичники (п.10 «Техника проведения операции»).     

     Недостатком этого метода проведения лапаротомии является такое осложнение как выпадение внутренних органов под брюшину (кишечник, матка, мочевой пузырь), но лишь в случаях отсутствия швов на брюшине (особенно, когда она отслоена) или при расхождении погружных швов.

Лапаротомия боковой брюшной стенки (через подвздох).

    Животное фиксируют на операционном столе в боковом положении.       

     Рациональным при этом доступе является  вертикальный разрез по ходу волокон наружной и внутренней косой брюшной мышцы в области подвздоха. Разрез должен располагаться на равном расстоянии между последним ребром и наружным углом подвздошной кости (на середине высоты боковой брюшной стенки), т.е. отступив от края поперечных отростков поясничных позвонков на 3-4 см.

     Длина разреза – 2-3 см.

     Мышечные слои брюшной стенки желательно разъединять тупым путём (рукояткой скальпеля или пальцами) по ходу мышечных волокон. Это способствует лучшему закрытию раны, предупреждению кровотечения и выпадения внутренних органов. Анатомическими пинцетами захватывают пристеночную брюшину, подтягивают её в полость раны и, убедившись, что вместе с ней не захвачен кишечник, скальпелем осторожно делают насечку, через которую тупоконечными ножницами «по пальцу» разрезают брюшину по длине операционной раны. Отыскивают и ампутируют яичники.               

     Недостатки. В связи с трудностью подтягивания противоположного яичника через один боковой шов, двухсторонняя овариоэктомия осуществляется в два приема. В итоге надо накладывать двухэтажные швы на 2 раны, что в целях сохранения здоровья животного (профилактика послеоперационных осложнений, связанных с самой хирургической раной) и в косметических целях, является существенными недостатками, по сравнению с проведением овариоэктомии по белой линии живота.

Вследствие высокого разреза в области подвздоха (рядом с наружным углом подвздошной кости) бывает кровотечение.

Кастрация через область  подвздоха имеет преимущество, что при этом оперативном доступе меньше бывает пролапсов, грыж и эвентраций (иногда отмечают отдельные случаи разнообразного смещения кишечника в сторону операционной раны).

Анатомо-топографические  данные.

      Операционное поле при овариоэктомии по белой линии живота подготавливается в области вентральной брюшной стенке - в позадипупочной части; а при проведении овариоэктомии через подвздох – в левой и правой подвздошной области.

     Основу брюшной стенки составляют мышцы живота, которые располагаются в три слоя.

     В каждом слое мышечные пучки по отношению к соседним слоям проходят почти под прямым углом. В вентральной половине мышцы живота своими сухожильными апоневрозами образуют жёлтую оболочку живота (жёлтая брюшная фасция), которая соединяется с соимённой оболочкой по белой линии живота.

А) Наружная косая мышца живота – musculus obliquus externus abdominis;

Б) Внутренняя косая мышца живота – m. obliquus internus abdominis;

В) Поперечная брюшная мышца – m. transversus abdominis;

Г) Прямая мышца живота – m. rectus abdominis;

Иннервация брюшных  мышц осуществляется подвздошно-подчревным и подвздошно-паховым нервами поясничного сплетения.

Васкуляризация: arteriae lumbales (артерии поясничные); arteria circumflexa ilium profunda (артерия окружная подвздошная глубокая). Артерии сопровождают одноимённые вены.

     Поперечная  фасция, предбрюшинная клетчатка  и пристеночная брюшина тесно  связаны друг с другом.

     Белая линия живота – узкий вытянутый фиброзный треугольник, образованный от слияния апоневрозов мышц живота, жёлтой и поперечной фасций и тянущийся от мечевидного хряща до лонного сращения. Примерно на середине белой линии имеется уплотнённый рубцовый участок – пупок.

В пупочной области располагаются сальник и петли тощей кишки.

В левой подвздошной  области располагаются задний конец селезёнки, петли тощей кишки.

В правой подвздошной области располагается часть поджелудочной железы и двенадцатипёрстной кишки, петли тощей кишки.

Лимфоотток происходит по поверхностным и глубоким лимфатическим сосудам, заложенным в подкожной клетчатке и в мышцах.

Анатомо-топографические  данные половых органов кошек.

Матка – двурогого типа; расположена в области поясницы. Тело матки относительно короткое, в краниальной части разделено перегородкой. Рога в виде тонкостенных трубок прямолинейно расходятся краниально по боковой брюшной стенке без видимой границы в яйцеводы, а каудально – в тело матки. Рога матки расположены в брюшной полости. Широкие маточные связки содержат значительное количество жировых отложений. От верхушек рогов отходят круглые маточные связки; они направлены к внутреннему паховому кольцу.

Иннервация: nervi pelvini (нервы тазовые); plexux hypogastricus.

Васкуляризация: arteria uterina (cranialis, media, caudalis) – маточные артерии (передняя, средняя и задняя). Венозная кровь отводится по одноимённым венам.

Яйцепроводы представляют собой тонкую извилистую трубку, соединяющую яичник с рогом матки. К трубному концу прикрепляется воронка яйцевода, а к маточному – связка яичника, соединяющая яичник с рогом матки.

Их краниальные части  заканчиваются хорошо развитой бахромкой. Брыжейка яйцепровода образует выраженную складку; в ней располагается  яичник.

Иннервация: nervi pelvini (нервы тазовые).

Васкуляризация: arteria umbilicalis (артерия пупочная).

Яичник – парный орган, на котором различают:

- два конца - трубный (краниальный) и маточный (каудальный);

- два края – брыжеечный и свободный;

- две поверхности –  латеральную и медиальную.

К брыжеечному краю прикрепляется  брыжейка яичника.

Внешняя форма яичника  – овально-удлинённая; длина в среднем около 1 см, ширина – не более 0,5 см. Они полностью покрыты яичниковой сумкой (бурсой), между серозными листками которой находятся сильно развитые пакеты жировой ткани, затрудняющие отыскивание яичников. Яичники подвешены на короткой брыжейке, отходящей с каждой стороны в несколько дистальнее каудального полюса почек на уровне 3-4 поясничных позвонков (примерно на середине расстояния между последним ребром и маклоком), т.е. выступают в перитонеальную полость. Брыжейка яичника и матки содержит большое количество жировой ткани.

Иннервация: plexux ovaricus (сплетение яичниковое).

Васкуляризация: arteria ovarica (трубная и маточная ветви яичниковой артерии).

Лимфатические сосуды из половых органов идут в лимфатические железы таза и крестца.

Инструменты, перевязочный материал, медикаменты.

     Инструменты, необходимые для проведения операции, собраны с учётом основного и аварийного набора.

 Профилактика  хирургической инфекции.

     Хирургическая инфекция  - это такая инфекция, которая возникает и развивается (в оперативной хирургии) при хирургических операциях и лечится хирургическими методами. Важно учитывать, что такая инфекция возникает и развивается как послеоперационное гнойно-воспалительное осложнение.

     Профилактика хирургической инфекции достигается путём соблюдения правил асептики и антисептики, т.к. «всё, что приходит в соприкосновение с раной должно быть свободно от бактерий».

Но следует учитывать, что поскольку любая хирургическая  операция связана с повреждением тканей и необходимостью их восстановления в послеоперационный период, поэтому приоритетное значение в профилактике хирургической инфекции достигается при адекватной сопротивляемости организма.

В период подготовки к операции проведены следующие  мероприятия, направленные на профилактику хирургической инфекции:

Подготовка  операционной комнаты.

Операционная комната  при СББЖ постоянно поддерживается в чистоте. Для мытья стола, стен, пола используется препарат «Лайна» (2-3 колпачка на 1 л воды с выдержкой 3-4 часа). Препарат уничтожает возбудителей кишечных, гнойных, грибковых, аденовирусных инфекций; обладает моющими свойствами; снимает заряды статического электричества; устраняет неприятные запахи; не портит поверхности.

Стерилизация  металлических инструментов.

     Мне известны следующие способы стерилизации металлических инструментов:

А) Горячие:

- кипячение с добавлением щёлочи;

- горячим воздухом, или «сухим жаром»;

- автоклавирование;

- фломбирование;

- текущим паром в  аппарате Коха;

Б) Холодные: - антисептическими растворами.

Из выше перечисленных  способов самым надёжным признан  способ стерилизации горячим воздухом («сухим жаром»). Проводят в сухожаровых шкафах при температуре 160 - 180ºС в течение 60 и 30 минут соответственно. 

Но в Кувшиновской СББЖ сухожаровой шкаф отсутствует, поэтому я провожу стерилизацию металлических инструментов незадолго до проведения операции способом кипячения в простом стерилизаторе, имеющем съёмную решётку с ручками.

Перед стерилизацией  инструменты проверены на пригодность.

Инструменты разложены  на съёмной решётке стерилизатора: ножницы, иглодержатели, гемостаты - в  полураскрытом виде; хирургические иглы нанизаны на кусок марли; ручка скальпеля со съёмным лезвием.

Порядок стерилизации:

В стерилизатор водопроводная  вода с добавлением щелочи (1% раствор  натрия карбоната (кальцинированная сода) – на 1 л воды 10 г) налита в таком  количестве, чтобы она полностью покрывала инструменты. Кипящий раствор щелочей обладает повышенной бактерицидностью и нейтрализует углекислоту, сокращает время проведения стерилизации.

Инструменты, разложенные  не решётке, погружены в кипящий  раствор не ранее чем через 3 минуты после его закипания. На  этот период углекислота воды нейтрализуется щёлочью, вода освобождается от растворённого в ней кислорода, а соли оседают в осадок, что предотвращает коррозию металлических инструментов. Время стерилизации с момента вторичного закипания не менее 15 – 30 минут.

По окончании стерилизации инструменты извлечены с решёткой стерилизатора и разложены на инструментальном столике, покрытом стерильным полотенцем, с соблюдением определённого  порядка (однотипные инструменты кладут на одном месте и в определённой, характерной для каждой операции последовательности) и покрыты стерильным полотенцем.

     Стерилизация шовного материала (сама не проводила) включает следующие этапы: механическая очистка и обезжиривание, стерилизация и дубление.

     В проведении стерилизации шовного материала по разработанным способам я считаю приоритетным сочетание двух условий – наличие необходимых  препаратов и время стерилизации (связано с дезинфицирующими, антимикробными свойствами препаратов).

     Из известных мне способов стерилизации нестерильного шовного материала – шёлка – я не применяла не один, т.к. для проведения операций у мелких животных в СББЖ закупается стерильный шёлк в ампулах.

     Конечно, я изучила способы стерилизации шёлка: Садовского, Першина, Тура, Кохера, Деница, Мелехова.

      Наиболее лёгок в применении способ Тура (шёлк помещают на 24-48 ч в 1% спиртовой раствор йода; хранят в этом растворе).

     Способы Деница и Кохера обладают высокой токсичностью в связи с наличием сулемы (дихлорида ртути), в способе Першина используется диоцид (препарат ртути).

Наиболее эффективным (при учете набора используемых препаратов и времени стерилизации) я считаю способ Садовского. Шёлк в мотках моют в горячей воде с мылом, ополаскивают и наматывают на катушки. Погружают в 0,5% раствор аммиака на 15 минут. Стерильным пинцетом переносят в 2% раствор формальдегида на 65 – 70% спирте, в котором и хранят до употребления.

Способы стерилизации кетгута (холодные):  Губарёва, Садовского – Котылёва, Покатило, Чубаря, Рубашева, Мелехова, Гейнад - Клаудиуса.

Если бы я проводила  стерилизацию кетгута, то для себя бы выбрала способ Садовского – Котылёва с учётом наличия.

 Для наложения погружных  швов, использовался стерильный  кетгут в ампулах. 

Стерилизация белья и предметов хирургического обихода.

При отсутствии возможности  провести стерилизацию хирургического белья и предметов хирургического обихода наиболее надёжно обеспечивающими  стерильность способами – автоклавирования и текущим паром - используется утюжение при максимальной температуре в течение 30 минут с медленным проглаживаем обеих сторон.

Хирургическое бельё  размещено в операционной на вешалке;

проутюженный материал - на столике.

Для проведения операции использовался стерильный перевязочный материал (марлевые салфетки, вата) заводского изготовления; стерильные хирургические перчатки.

Подготовка  животного к операции.

     Желательно  перед проведением операции животному  создать условия для самопроизвольного  мочеиспускания и дефекации. Если  этого не произошло до начала операции, освобождают мочевой пузырь от мочи, надавливая рукой.

Подготовка  операционного поля в позадипупочной части вентральной брюшной стенки проводится после фиксации животного; условно подразделяется на 4 этапа:

- механическая очистка;

- обезжиривание;

- обработка антисептиком (асептизация);

- изоляция поля операции.

Величина подготавливаемого поля должна быть достаточной для обеспечения  стерильных условий операции.

Операция плановая, поэтому хозяину  рекомендовано за сутки до операции, провести чистку животного и удаление волосяного покрова области живота, что позволяет устранить мацерацию и раздражение кожи после бритья (но удаление волосяного покрова в домашних условиях не произведено).

Механическая очистка: мытьё тёплой водой с хозяйственным мылом; удаление волосяного покрова выстриганием и бритьём; насухо вытирается чистым полотенцем. 

Обезжиривание операционного  поля - стерильным марлевым тампоном, пропитанным 0,5% раствором нашатырного спирта  в течение 1-2 минут. Затем обезжиренное поле операции обработано антисептиком (асептизация) по способу Филончикова – Гроссиха.

Сущность способа: обезжиренное поле «дубят» 5% раствором йода сначала после механической очистки перед выполнением местного обезболивания, а затем непосредственно перед разрезом (после инфильтрационной анестезии). При этом интервал между обработками должен быть не менее 5 минут. Обработку начинают с центра операционного поля к периферии концентрическими движениями или параллельными полосами. Дополнительно поле операции обрабатываю 5% спиртовым раствором йода перед наложением швов на рану и после наложения швов.

5% спиртовой раствор йода –  сильное антисептическое средство. Дезинфицирующий эффект йода  усиливается при предварительном  обезжиривании кожи. Йод хорошо растворяет жиропот и глубоко проникает в кожу, воздействуя на микроорганизмы, находящиеся как на поверхности, так и в толще кожи. Раствор йода наносят на сухую кожу, т.к. в присутствии влаги он действует слабее.

Помимо, способа Филончикова  – Гроссиха, существуют следующие способы асептизации операционного поля:

- способ Мыша (с применением 10% водного раствора перманганата калия);

- способ Борхерса (основан на применении 5% раствора формалина в 96° спирте);

- обработка катаполом;  этонием;  йодопирином; дегмином; асепуром; хлоргексидином; декатоксином и др. антисептиками.

Изоляция поля операции от окружающих участков кожного покрова проведена с помощью стерильной простыни с прорезью в центре для оперируемой области. Это исключает попадание в рану волос, перхоти, пыли с отдельных участков кожного покрова при некоторых движениях животного во время операции.

Подготовка  рук хирурга к операции.

     В процессе операции руки хирурга непосредственно соприкасаются с раной.

     На коже рук, в порах, многочисленных складках, волосяных мешочках, потовых и сальных протоках находится большое количество различной микрофлоры, в том числе и патогенной.

    Хирург должен следить за состоянием кожи рук, не допуская появления различных повреждений.

Подготовку рук  начинаю за 10-15 минут до операции.

Обработка рук состоит  из трёх этапов:

- механическая очистка;

- химическая дезинфекция;

- дубление кожи.

Механическая очистка: коротко обрезаю ногти, удаляю заусенцы, очищаю подногтевые пространства.

Обработка рук (химическая дезинфекция).

     Я изучила следующие способы подготовки рук: Альфельда, Оливкова, Спасокукоцкого - Кочергина, Напалова, Кияшева, которые обеспечивают стерильность рук в среднем на 20-30 минут.

     В настоящее время удобно применять бактериостатические препараты (церигель, 0,5% раствор катапола, раствор хлоргексидина биглюконата в 70% спирте (1:40)), которые обеспечивают стерильность рук в течение 2,3 и 4 часов соответственно, не вызывают раздражения и воспалительных явлений кожи; но Кувшиновская СББЖ ими пока не обеспечена.

     Для себя я выбрала оптимальный способ (из расчёта применяемого набора препаратов) -  способ Альфельда.

     В течение 3 – 4 минут мою руки щёткой в тёплой воде с хозяйственным мылом от кисти в направлении к предплечью, вытираю проутюженным полотенцем; затем в течение 3-х минут протираю тампоном, пропитанным 70º этиловым спиртом; после подсыхания кожи, смазываю подногтевые пространства 5% спиртовым раствором йода.

     Этиловый спирт имеет весьма широкий спектр антимикробного действия, и обладают быстрым бактерицидным действием (наиболее пригоден для протирания рук хирурга).

     О свойствах 5% спиртового раствора йода указывало ранее.

Т.к. обработка рук  антисептическими средствами не всегда обеспечивает их полную стерильность и длительность (при данном способе на 20-30 минут), дополнительно использую стерильные (одноразовых) резиновые хирургические перчатки.

 Обезболивание.

     Операция  проводится  под общим наркозом или при сочетанном применении нейролептиков и местной инфильтрационной анестезии.

Чтобы исключить возможность  рвоты и аспирации во время  анестезии, уменьшить нагрузку на органы ЖКТ животное выдерживают на 12-18 ч голодной диете. Дачу воды не ограничивают.

Вышеуказанные рекомендации соблюдены владельцем кошки.

Наркоз кошек (рекомендуемый).

Премедикация. Подкожно инъецируют 1% раствор атропина сульфата в дозе 0,5-1 мл/кг массы животного. Затем в качестве вводного наркоза через 15-20 минут внутримышечно вводят 2% раствор рометара в дозе 0,1 мл/кг массы тела.

Кроме рометара, внутримышечно кетаминсодержащий препарат урсотомин в дозе 0,1 мл/кг массы тела. Рекомендуют также введение 1% раствора кетамина внутримышечно в дозе 0,1 мл/кг. Антидотом ему служит раствор иохимбина в дозе 0,125 мл/кг.

Премедикация  позволяет облегчить техническое осуществление наркоза, устранить побочное действие наркотика, уменьшить или устранить опасные вегетативные рефлексы.

Тиопентал – натриевый  наркоз относят к быстродействующему. Вводят внутривенно в дозе 0,025 – 0,03 г/кг массы животного в 5-10% концентрации. Для сохранения физиологических показателей дыхания (во избежание коллапса) инъецируют медленно. Действие наступает сразу и продолжается 20-40 минут. Посленаркозный сон исчезает через 1-4 ч.

Для диких и зоопарковых  животных нередко используют 2% раствор рометара в дозе 0,75 – 4 мл на 10 кг массы животного.

Для кошек рекомендован эфирный наркоз.

     Но я провожу операцию при сочетанном применении нейролептика – рометара 2% и местной инфильтрационной анестезии.

Рометар 2% - препарат, оказывающий успокаивающее, снотворное, анальгетическое, миорелаксантное, а также некоторое наркотическое действие. В начальной и конечной фазах действия рометара не наблюдается стадий возбуждения. Полное действие наступает спустя 5-15 минут после введения препарата после внутримышечного применения. Продолжительность успокаивающего действия у мелких животных 1-2 ч, болеутоляющего – 15-30 минут. Через 30-40 минут после первого введения препарат можно ввести повторно в половинной дозе.

Дозу рометара в количестве 0,6 мл (0,2 мл/кг живой массы) ввожу внутримышечно с соблюдением правил асептики на месте инъекции. Через 30 минут вводится внутримышечно повторная доза в количестве 0,3 мл.

Инфильтрационная  анестезия

 (пропитывание тканей анестезирующим раствором на месте рассечения тканей).

Применяю 0,5% раствор новокаина, который действует на нервные рецепторы, нервные окончания. Пропитывание тканей осуществляю путём инъекций раствора по всей линии намеченного разреза; сначала инъецирую раствор в подкожную клетчатку (для обезболивания кожи), затем раствор ввожу послойно в глубжележащие ткани. Чтобы не вызывать лишнего болевого раздражения после прокола кожи или тканей, по мере продвижения иглы следует «посылать» раствор новокаина впереди иглы. При проведении лапаротомии послойным рассечением тканей продолжается инфильтрация глубжележащих тканей.

Техника проведения операции.

Овариоэктомия кошек  проводится двумя способами:

- овариоэктомия через  разрез вентральной брюшной стенки (медианный, или парамедианный  разрезы);

- овариоэктомия через разрез боковой брюшной стенки (через подвздох).

Удаление яичников производится:

- с наложением кетгутовых лигатур;

- торзированием яичников.

Я провожу  овариоэктомию по белой линии живота

с удалением  яичников после наложения кетгутовых лигатур.

Оперативный доступ (проведение лапаротомии (п.5)).

Брюшную стенку разрезаю по белой линии живота (медианный разрез), отступив на 1 см каудально от пупка (позадипупочная область) впереди лонного сращения.

Форма разреза  – прямолинейная.

Направление разреза -  продольное.

Длина разреза  – 3 см.

Разъединение  кожи  провожу способом разреза (рассечения) при помощи скальпеля после устранения её подвижности и смещаемости (фиксирую её пальцами левой руки).

Разъединение  мышечной ткани  провожу способом раздвигания (расслоения) браншами ножниц.

Брюшину ассистент захватывает (фиксирует) пинцетом в складку, затем я осторожно рассекаю её скальпелем. Полученный разрез увеличиваю ножницами под контролем пальца, введённого в брюшную полость.

Для остановки  наружного кровотечения используются стерильные тампоны и накладываются гемостатические пинцеты (с учётом хрупкости тканей у кошек).

Оперативный приём.

В брюшную полость ввожу указательный палец правой руки, и на дорсальной части брюшной стенки сбоку от верхушки мочевого пузыря начинаю отыскивать рог матки (он отличается от кишки меньшим диаметром, округлой форме и значительно большей плотностью стенок) или яичник.

 Рог матки вывожу из брюшной полости и, перебирая его в руках, дохожу до яичника.

Если сразу найден яичник (можно захватывать пинцетом Кохера), то его вывожу из брюшной полости наружу в рану. Широкую маточную связку прокалываю иглой с длинной лигатурой и через это отверстие провожу 2 кетгутовые лигатуры (сквозь маточную связку, брыжейку и сосуды). Одной из них перевязываю конечные ветви средней маточной артерии вместе с концом рога матки, другой – яичниковую артерию вместе с брыжейкой яичника.

Яичник отсекаю ножницами, а культю обрабатываю 5% спиртовым раствором йода, рог матки погружаю в брюшную полость.

В такой же последовательности удаляю другой яичник.

Во время  проведения операции ткани операционной раны и органы периодически орошали 0,5% раствором новокаина.

Брюшную полость, культи связок яичников осматриваю с целью выявления кровотечения, а также разрыва органов. Ввожу в брюшную полость трициллин, растворённый на 0,5% новокаине.

Приступаю к  заключительному этапу операции.

Заключительный  этап операции предусматривает проведение соединения тканей наложением швов, закрытия  раны повязкой или оставление её открытой по показанию и др.

После проведения хирургической операции, осмотра операционной раны и обезвреживания кожи вблизи краёв раны жидкостью (в моём случае - 5% спиртовым раствором йода), провожу наложение швов с соблюдением принципов соединения тканей.

При наложении шва необходимо следить за тем, чтобы поверхности краёв раны равномерно соприкасались (прилегали друг к другу) между собой на всём протяжении. Мышцы расправляют по ходу мышечных волокон.

На ткани  белой линии (брюшину, внутреннюю стенку прямой мышцы живота, поперечную фасцию) накладываю непрерывный – скорняжный – шов из кетгута (№1).

Наружную стенку прямой мышцы живота, подкожную клетчатку и кожу ушиваю прерывистым – простым узловатым – швом с применением шёлка (№2); промежуток между стежками шва 0,75 см. Накладываю 4 стежка. Каждый стежок шва закрепляю хирургическим узлом (узлы должны быть прочными, небольшими, не распускаться и не сдавливать ткани) так, чтобы узлы располагались сбоку от раны. Закрыв рану швами, обрезаю нитки ножницами, оставляя концы ниток около 0,5 см.

В заключение места проколов в коже, швы обрабатываю монклавитом. На животное с целью защиты раны надевается попона.

В целях нормализации дыхательной и сердечной деятельности вводится подкожно 10% раствор сульфокамфокаина в дозе 0,3 мл.

Возможные осложнения,

их предупреждение и устранение.

     Осложнения при кастрации самок встречаются значительно реже,

чем при кастрации  самцов.

Наиболее  частыми осложнениями являются:

- кровотечения (чаще из внутренней яичниковой артерии);

- ятрогенные повреждения мочевого пузыря и (или кишечника); ущемление кишки в ране брюшной стенки; недержание мочи;

- гранулема культи  яичника;

- синдром сохранения  ткани яичника;

- выпадение внутренних  органов под брюшину;

- увеличение веса / ожирение;

- а также осложнения, связанные с самой процедурой операции, т.е. хирургическими ранами брюшной стенки (гематомы, абсцессы, хирургическая инфекция, развитие перитонита, расхождение швов, образование грыж и реакция тканей на шовный материал).

Все эти осложнения возникают  вследствие неудовлетворительной техники  оперирования и нарушения правил асептики и антисептики.

При правильном проведении операции и соответствующем содержании животных после кастрации осложнений, как правило, не бывает.

Наибольшая угроза развития серьёзных послеоперационных осложнений имеет место в первые 2-3 дня, т.е. к тому времени, пока не образуется надёжная спайка краёв брюшины.

Травматизм  при фиксации (растяжения суставов или мышц, переломы) исключают проведением наркоза.

1. Кровотечение обычно связано с небрежным лигированием кровеносных сосудов яичников и матки, а также может быть из сосудов брюшной стенки. Во время лапаротомии в области подвздоха кровотечение бывает вследствие высокого разреза (рядом с наружным углом подвздошной кости). Для предупреждения кровотечения при наложении лигатуры на связку и завязывании узла не следует сильно тянуть за концы лигатуры. Особенно опасные кровотечения возникают у самок, оперируемых во время эструса, когда матка и яичники сильно гиперемированы.

     Геморрагию можно выявить визуально в ходе операции (пережать кровоточащий сосуд гемостатическим пинцетом и торзировать или наложить на него лигатуру, т.е. провести механический способ остановки кровотечения) или о ней свидетельствует развитие геморрагического перитонита (внутреннее кровотечение).

     В целях профилактики кровотечения рекомендуется химический способ остановки, т.е. применение кровоостанавливающих веществ общего (адреналин, викасол, этамзилат, 10% раствор кальция хлорида или натрия хлорида) и местного действия (перекись водорода, йодоформ, гемостатические губки). Кетгут из-за содержащейся в нём тромбокинетической субстанции является средством остановки кровотечения.

     Возникающее после операции кровотечение сопровождается признаками острой анемии (бледность слизистых оболочек, учащение пульса  и дыхания, снижение артериального давления и содержание гемоглобина в крови).

     Интраперитонеальное кровотечение не всегда поддаётся консервативному лечению.

     В сомнительных случаях (при внутреннем кровотечении) рекомендуется хирургическое вмешательство. Техника лапаротомии такая же, как при овариоэктомии (рану брюшной стенки расшивают и расширяют), но длину разрез увеличивают для того, чтобы иметь возможность тщательно осмотреть все участки лигирования. Находят кровоточащий сосуд и перевязывают его шелковой лигатурой; кровь, скопившуюся в брюшной полости, удаляют отсосом; животному вливают совместимую кровь или физраствор в больших дозах.

2. Разрыв кишки и (или) мочевого пузыря возможен в результате перфорации брюшины хирургическими инструментами, особенно, когда кишечник или мочевой пузырь переполнены. Обнаруживается при проведении операции по запаху кишечных газов и выхождению из раны кишечника, мочевого пузыря их содержимого. Необходимо сразу захватить поврежденную часть кишки или мочевого пузыря и вытянуть из брюшной полости наружу, затем наложить двухэтажный шов. Стерильным тампоном с поверхности раны удаляют кровь и экскрет, промывают повреждённый участок кишки тёплым раствором этакридина лактата (1:1000) и вправляют её в брюшную полость. На рану мочевого пузыря накладывают двухэтажный шов после освобождения от мочи.

Для профилактики перитонита применяются антибиотики.

При ущемлении  кишки рану расшивают и в случае её омертвения делают резекцию.

3. Гранулема  культи яичников наблюдается при использовании нерассасывающегося шовного материала в сочетании со слабой хирургической техникой. Неудовлетворительная асептика и повреждение сосудов в остаточных тканях могут приводить к образованию абсцессов в участках лигирования.

4. Синдром сохранения тканей яичников чаще является результатом несоответствующей хирургической техники и, как следствие, неполной резекции одного или обоих яичников. Также причиной может служить присутствие участков «молчащей» овариальной ткани вне яичника. Такая эктопическая ткань может стать активной в любое время.

     Диагноз ставят на основании результатов вагинальной цитологии при условии, что самка не получает экзогенных эстрогенов.

     Лечение состоит в хирургическом удалении оставшейся ткани яичников, которую легче обнаружить в период эструса или в начале диэструса.

     Возникающее иногда недержание мочи чаще всего  обусловлено ослаблением сфинктера уретры. В большинстве случаев ослабление сфинктера уретры развивается в течение года после операции. Основной целью лечения является восстановление тонуса уретры. Хирургические методы лечения включают цистоуретропексию,  уретропластику и создание искусственного сфинктера.

     Считается, что стерилизованные животные в несколько большей степени подвержены риску образования в моче уралитов.

4. Выпадение внутренних органов под брюшину (кишечник, матка, мочевой пузырь) встречается при лапаротомии по белой линии живота.

Кастрация через область подвздоха имеет преимущество, что при этом оперативном доступе меньше бывает пролапсов, грыж и эвентраций. Однако при этом методе отмечают отдельные случаи разнообразного смещения кишечника в сторону операционной раны. Основной причиной этих осложнений является отсутствие швов на брюшине, особенно в тех случаях, когда она отслоена.

Лечебная помощь при выпадении кишечника или рогов матки в операционную рану может быть эффективной, если её оказывают как можно раньше. Необходимо снять швы, раскрыть рану (разрушить фибринозную спайку) и после ревизии раневой полости вправить в брюшную полость выпавшую петлю кишки или рог матки с последующим наложением швов на брюшину и кожу. Если выпавшая в рану петля кишки будет ущемлена и развился некроз, необходимо провести резекцию этого участка.

Профилактика осложнения. Для предупреждения отслоения брюшины необходимо избегать перфорации брюшины тупым способом.

После удаления яичников необходимо расширить раневыми крючками рану, захватить гемостатическим  пинцетом края разрезанной брюшины с обеих сторон раны, а затем указательным пальцем, введённым в брюшную полость, обвести вокруг всего края раны и тщательно проверить, не осталось ли в ней петли кишечника или рогов матки. После проверки на рану брюшины необходимо наложить шов.

5. Увеличение веса / ожирение.

Гормональная функция женских половых желез тесно связана с внутренней секрецией. После кастрации значительно изменяется деятельность желез внутренней секреции, что качественно влияет на обмен веществ, физиологическое состояние животного, его рост и развитие.

После овариоэктомии  снижается способность регулировать потребление пищи вследствие прекращения выработки эстрогенов яичниками. Вдобавок, замедляется процесс обмена веществ. Возникающая склонность к перееданию создаёт предпосылки для развития ожирения. Несмотря на особый шарм упитанных кошечек, ожирение – это такая же болезнь, как и многие другие.

     Таким образом, после стерилизации необходимо организовать диетическое питание, контроль над рационом, обеспечение активности.

6. Осложнения, связанные с самой процедурой операции.

Расхождение краёв раны. Причина – развязывание узлов шва или разрыв краёв раны швами.

     Если края раны разрываются швами на протяжении первых четырёх суток, в этом случае для их соединения следует наложить дополнительные швы. При более позднем расхождении краёв швы не накладывают, и заживление раны идёт по вторичному натяжению.

Для профилактики раневой инфекции необходимо местное применение антибактериальных препаратов; лечение антибиотиками.

Развившийся перитонит лечат антибиотиками.

При гнойных  заболеваниях брюшной стенки делают широкие разрезы и систематически обрабатывают раны с применением однокомпонентных, а лучше многокомпонентных порошков сульфаниламидов и антибиотиков; проводят лечение антибиотиками.

     При проведении овариоэктомии и в послеоперационный период осложнений не наблюдалось.

Послеоперационный уход за животным.

    Послеоперационный период – время от окончания хирургической операции до момента выздоровления животного.

    Полное восстановление занимает от 5 до 14 дней.

Различают неосложнённый  и осложнённый послеоперационный  периоды (при развитии осложнений, указанных  в п.11).

    Овариэктомия – полостная операция, проводимая под общей анестезией, поэтому владельцы должны помнить об определенном анестезиологическом риске. 

РЕКОМЕНДАЦИИ.

     В первый день после операции животному создают покой.

     В послеоперационный период от владельцев требуется регулярно проводить осмотр и обработку раны (уход за швами) в течение недели до их снятия препаратом монклавит. 11 августа рекомендовано доставить кошку в СББЖ для осмотра. Хозяйка должна созваниваться со мной, и сообщать сведения об общем состоянии животного (если необходимо, то и доставить кошку в СББЖ), чтобы у меня была возможность контролировать  процесс заживления тканей, давать консультации, и в случае развития осложнений вовремя предпринять необходимые меры.

     В послеоперационный период на кошку надевается специальная попонку, которая предотвращает попадание бактерий на шов, а также защищает от попыток  разлизывания.

     В период реабилитации после операции не следует кормить животное сухим кормом, чтобы не спровоцировать запоры; вообще, сухой корм не рекомендуется использовать в кормлении. Следует ограничивать кошку в активном движении, чтобы предотвратить возможность нарушения целостности швов. После снятия швов, как правило, никакие ограничения в пище и движении не показаны. В целях профилактики ожирения, рекомендовано сбалансированное кормление животного обычными кормами, исключение перекорма животного.

    11 и  14 августа проведены подкожные  инъекции иммуномодулятора «Риботан»  в дозе 1,5 мл.

     С 10 дня после операции в целях профилактики мочекаменной болезни, нарушений обмена веществ (в частности, минерального), снятия аллергических реакций рекомендована дача препарата «Цамакс» для стерилизованных кошек в профилактической дозе 0,5 г/1 кг веса 1 раз в день в течение 2 – х недель с кормом (смешивается непосредственно перед кормлением).

     Снятие швов назначено на 18 августа (на 7 день после проведения операции). Снимают только поверхностные швы, наложенные на кожу. Погруженные швы инкапсулируются или рассасываются.

   Снятие швов провожу, предварительно сделав механическую очистку и обработав место расположения швов 5% спиртовым раствором йода.

При снятии прерывистого шва хирургическим пинцетом захватываю узел, слегка его приподнимаю и подтягиваю до появления участка погружённой в ткани нити. Этот участок нити вблизи кожи перерезаю и нить извлекаю. После извлечения нитей место расположения шва прикатываю ватным валиком, смоченным 5% спиртовым раствором йода.

Заключение

(эпикриз, обсуждение, обобщение, выводы).

     Овариоэктомия проведена 10 августа 2010 года по белой линии живота с удалением яичников после наложения кетгутовых лигатур.

    Подготовка инструментов (основного и аварийного набора), операционного поля и рук хирурга проведены по одному из рекомендованных способов. Использовался стерильный перевязочный и шовный материал.

    Осложнений при проведении фиксации, обезболивания, операции и в послеоперационный период не возникло.

    Рекомендованные  мероприятия в послеоперационный период выполнены хозяйкой, которая поддерживала связь, а в назначенные дни доставляла кошку в СББЖ для осмотра общего состояния животного и послеоперационной раны в целях контроля за течением послеоперационного периода.

    Швы сняты 18 августа 2010 года.

    Основные  рекомендации о дальнейших условиях  содержания и кормления животного  направлены на профилактику ожирения. Рекомендована дача легкоусвояемого,  питательного корма, (сбалансированное  кормление); периодическая витаминопрофилактика.

ИСПОЛЬЗОВАННАЯ  ЛИТЕРАТУРА.

     Петраков К. А., Саленко П. Т., Панинский С. М.

Оперативная хирургия с  топографической анатомией животных. 2-е изд., перераб. и доп. – М.: КолосС, 2008. – 453 с.: [4] л. ил.: ил. – (Учебники и  учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведений).

     Соболев В. А., Созинов В. А.

Хирургические операции у собак и кошек. – М.: «Аквариум-Принт», 2009.

– 232 с.: ил.

     Руководство по репродукции и неонатологии собак и кошек.

Пер. с англ. /под ред. Дж. Симпсон, Г. Ингланда, М. Харви –

М.: Софион. 2005, 280 с., ил.

     Оперативная хирургия с основами топографической анатомии:

Учебник / Э. И. Веремей, В. М. Власенко, А. Н. Елисеев и др.; Под  общ. ред. Э. И. Веремея, Б. С. Семёнова. –  Мн.: Ураджай, 2001. – 537 с.: ил. – (Учебники и учебные пособия для высших учебных заведений).

     Ветеринарная Энциклопедия. Гл. ред. К. И. Скрябин.

М., «Советская Энциклопедия», 1972.

(Энциклопедии. Словари.  Справочники).

Т. 3. Зуд – Метрит. 1972. 1128 стб. с илл., 5 л. илл.

     Дюльгер Г. П. Акушерство, гинекология и биотехника размножения кошек. – М.: КолосС, 2004. – 101 с.: ил. - (Учебники и учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведений).

     Зеленевский  Н. В., Хонин Г. А. Анатомия  собаки и кошки. 

Учебник для студентов  высших учебных заведений. – СПб. – 344 с.

      Жуленко В. Н., Горшков Г. И.

Фармакология / Под ред. В. Н. Жуленко. – М.: КолосС, 2008. – 512 с.: ил. – (Учебники и учеб. пособия для  студентов высш. учеб. заведений).

    В написании курсовой работы я не использовала статьи из журналов и сборники научных трудов, а также  информацию из Интернета.