Кастрация хряков
Автор работы: Пользователь скрыл имя, 10 Июня 2014 в 19:30, курсовая работа
Краткое описание
Опухоли кишечника и желудка, различные нарушения перистальтики (вплоть до пареза кишечника) - все это представляет опасность. Самостоятельное заболевание - заворот желудка - тоже вызывает непроходимость.Однако все описанные выше случаи встречаются сравнительно редко. Основной причиной непроходимости все-таки являются инородные предметы, которые проглатывает собаки. Что только не находят хирурги в ходе операций: начиная от обрывков резиновых и пластиковых игрушек и кончая строгим ошейником (!) вместе с поводком. Большое количество животных попадает на операционный стол в период новогодних елок. Мишура - традиционное украшение зимнего праздника - будучи проглоченной, очень часто вызывает нарушения перистальтики кишечника, что во многих случаях ведет к гибели животного
Содержание
Введение
Определение операций и показание к ней. Этиология, симптоматика, диферинциальный диагноз, профилактика.
Топографическая анатомия оперируемой области и органа
Подготовка к операции.
4.1 подготовка животного
4.2 инструментарий и его стерилизация, стерилизация шприцов и игл
4.3 подготовка операционного поля
4.4 подготовка рук хирурга
4.5 стерилизация шовного материала
4.6 стерилизация перевязочного материала, хирургического белья, предметов хирургического обихода
4.7 правила работы в операционной, личная гигиена ветеринарного специалиста
5. Фиксация животного
6. Обезболивание
7. План и техника операции (оперативный доступ, оперативный прием, остановка кровотечений, заключительная часть операции)
8. Послеоперационное содержание
9. Заключение( обсуждение, вывод, рекоминдация владельцу животного)
10. Экономическая эфективность оперативного вмешательства
11.Список литературы
Вложенные файлы: 1 файл
хирургия курсовая (2).docx
— 201.88 Кб (Скачать файл)Рис. 62
Топография органов брюшной полости. Вентральная" поверхность (по Б. Біввоп. 1967, с изменениями и дополнениями)
1 — печень; 2 — желудок; 3 — левая почка; 4 — яичники; 5 — рога матки; 6 — селезенка; 7 — матка; 8 — мочевой пузырь; 9 — ободочная кишка; 10 — двенадцатиперстная кишка; 11 — подвздошная кишка; 12 — слепая кишка.
Рис. 67
Схема подразделения кишечника на отделы
1 — пищевод; 2 — желудок; 3 — двенадцатиперстная кишка; 4 — поджелудочная железа; 5 — тощая кишка; 6 — подвздошная кишка; 7 — слепая кишка; 8 — восходящее колено ободочной кншки; 9 — поперечное колено ободочной кишки; 10 — нисходящее колено ободочной кишки; 11 — ампула прямой кишки; 12 — аиус.
Топография кишечника (вид справа) (по S. Sisson, 1967, с изменениями и дополнениями)1 — прямая кишка; 2 — влагалище; 3 — вульва; 4 — мочевой пузырь; 5 — ободочная кишка; 6 — мочеточник; 7 — тонкий кишечник; 8 — слепая кишка; 9 — яичник; 10 — рог матки; 11 — правая почка; 12 — поджелудочная железа; 13 — двенадцатиперстная кишка; 14 — печень; 15 — каудальная доля легкого; 16 — средняя доля легкого; 17 — перикард; 18 — краниальная доля легкого.
4.Подготовка к операции.
4.1 подготовка животного
Благоприятный исход оперативного вмешательства
зависит не только от общего состояния
животного, характера (тяжести) заболевания
и качества выполнения операции, но и от
полноценности предоперационной подготовки
животного.
В комплекс
мер по подготовке животного к операции
включают: 1) всестороннее изучение больного
животного и ознакомление с эпизоотической
обстановкой хозяйства, из которого доставлено
животное на излечение; 2) устранение сопутствующих
заболеваний, затрудняющих выполнение
операции, и применение средств, повышающих
защитные силы у больного животного; 3)
назначение диеты, соответствующего режима
содержания и зоогигиенического ухода
за животными (чистка кожного покрова,
частичное или полное обмывание животного,
расчистка копыт и т. п.).
Применяют
эти меры с учетом общего состояния больного
животного, характера его заболевания
и тяжести предстоящей операции. В тех
случаях, когда общее состояние животного
хорошее и операция легкая, ограничиваются
проведением лишь некоторых из указанных
мероприятий; при тяжелых операциях, наличии
сопутствующих болезней применяют весь
комплекс мер предоперационной подготовки
животного.
Основным
условием правильной подготовки животного
к оперший является всестороннее изучение
его. В этих целях провопи полное клиническое
и лабораторное (анализ крови, мочи, кала)
исследования. Они имеют целью выяснить,
не поражено ли животное заразной болезнью,
а также выявить возможные нарушения работы
сердца, легких, кишечника и пр., своевременное
распознавание которых позволяет предупредить
осложнения, связанные с проведением операции.
На основании
результатов исследования устанавливают
показания и противопоказания к операции,
определяют допустимость применения того
или иного способа обезболивания, фиксации
животного.
При
обнаружении исследованием сопутствующих
заболевании, затрудняющих выполнение
операции, животное подвергат лечению.
Так, например, при наличии в участке операции
затёков гноя последний предварительно
удаляют, а образовавшиеся заточные карманы,
полости, свищевые ходы промывают и дезинфицирующими
растворами; при пониженной свертываемости
крови переливают совместимую кровь; при
пониженной сопротивляемости организма
стимулируют его защитные силы путем усиленного
питания, тканевой терапии, переливания
крови, аутогемотерапии и пр.
Чтобы
избежать возможных разрывов кишечника
и мочевого пузыря, животному перед операцией,
сопровождающейся повалом и применением
наркоза, назначают голодную диету продолжительностью
от 6 до 24 ч и дают только воду. Непосредственно
перед операцией опорожняют мочевой пузырь
и прямую кишку. С этой целью делают пяти-
или десятиминутную проводку животного
или применяют мочевой катетер и ставят
клизму.
4.2Стерилизация хирургических инструментов
Стерилизация инструментов – первый
шаг на операции. Инструменты можно стерилизовать,
кипячением (основной способ), обжиганием
(фламбирование) и антисептическими растворами
(химическая стерилизация).
Перед стерилизаций инструменты протирают,
удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность.
Инъекционные иглы после удаления смазки
промывают эфиром или спиртом. Сложные
инструменты (ножницы, иглодержатели,
гемостатические пинцеты) стерилизуют
полураскрытыми или в разобранном виде.
Режущие и колющие инструменты обвёртывают
марлей для предохранения от затупления.
Стерилизация кипячением. Для стерилизации
инструментов пользуются простым стерилизатором,
для подогрева которого используют любой
источник тепла (примус, газовую плиту,
электроплитку и т. д.), или электрическим.
При отсутствии стерилизатора используют
любую эмалированную посуду с крышкой.
Стерилизатор представляет собой продолговатую
металлическую коробку с крышкой и вставной
сеткой с ручками, за которые ее удерживают
крючками при извлечении инструментов
из кипящей воды.
При работе с электрическими стерилизаторами
следят за исправностью проводов, штепсельной
вилки и розетки, а также не допускают
затекания воды в нагревательный элемент.
Стерилизатор ставят на огнеупорный материал.
Для стерилизации инструментов кипячением
в стерилизатор наливают необходимое
количество воды и добавляют 0,25% гидроокиси
натрия или 2% карбоната натрия. Указанные
растворы щелочей, осаждая углекислые
соли кальция и магния, предохраняют инструменты
от ржавчины. Раствор доводят до кипения
и через 3 – 5 мин с момента его закипания
в стерилизатор погружают сетку с предварительно
разложенными на ней инструментами. В
холодную воду инструмент класть нельзя,
так как выделяющийся при нагревании ее
кислород быстро окисляет металл.
Продолжительность стерилизации инструментов
15-20 мин; время отсчитывают от момента
закипания раствора после погружения
в него сетки с инструментами. По истечении
указанного срока сетку извлекают из стерилизатора
и, как только стечет с инструментов вода,
их раскладывают на стерильном инструментальном
столике, тазике или оставляют в стерилизаторе,
предварительно вылив из него воду.
Инструменты после операции моют щеткой
в проточной воде, кипятят в 2%-ном растворе
бикарбоната натрия, вытирают, слегка
смазывают (только замок) вазелиновым
маслом и убирают в инструментальный шкаф.
Продолжительность кипячения инструментов
после асептических операций 15 мин, а после
гнойных – 45 мин. Инструменты, загрязненные
анаэробными микробами (возбудители газовой
гангрены, столбняка, некробациллеза и
др.), кипятят с небольшими перерывами
2-3 раза по 30 мин.
Стеклянные приборы (шприцы, мензурки,
пробирки и др.) стерилизуют отдельно от
металлических инструментов в дистиллированной,
дождевой или прокипяченной воде без добавления
щелочей. Шприцы кипят обязательно в разобранном
виде, так как они могут лопнуть вследствие
разницы в коэффициенте расширения при
нагревании стеклянного цилиндра и металлического
поршня. Перед кипячением составные части
шприца, и другие стеклянные предметы
предварительно обвертывают марлей и
опускают в еще не нагретую воду. Продолжительность
стерилизации стеклянных предметов 15
мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать
в автоклаве.
Резиновые предметы стерилизуют кипячением
в дистиллированной воде в течение 30 мин
пли в автоклаве.
Стерилизация обжиганием. Этим способом
обычно стерилизуют крупные инструменты
и эмалированную посуду. Другие инструменты
стерилизуют обжиганием редко, преимущественно
при неотложных операциях, когда нет времени
для стерилизации кипячением. Инструменты
кладут в эмалированный тазик или стерилизатор,
обливают небольшим количеством (10 мл)
спирта и равномерно обжигают. Стерилизация
обжиганием недостаточно надежна. Кроме
того, при обжигании сильно портятся инструменты,
особенно режущие.
Химическая стерилизация. Для химической
стерилизации инструменты погружают в
один из следующих антисептических растворов:
1) жидкость Каретникова (формалин – 20
г, кислота карболовая – 3 г, натрия карбонат-
15 г, вода дистиллированная- 1000 мл) -на 30
мин; 2) 3 – 5%-ный раствор кислоты карболовой
– на 30 или 60 мин; 3) раствор бактерицида
1:3000 – на 10 мин; 4) 1%-ный спиртовой раствор
бриллиантового зеленого на 15 мин; 5) 0,5%-ный
спиртовой раствор формалина; 6) раствор
фурацилина 1:5000.
Химическая стерилизация инструментов
применяется в случаях, когда по каким-либо
причинам нет возможности прокипятить
их или если они от кипячения портятся.
Оптические инструменты (цистоскопы, ларингоскопы
и др.) стерилизуют погружением в спирт
на 10 мин, а затем переносят г. раствор
основной цианистой ртути (1:1000) на 15 мин.
Окуляры в химические растворы погружать
нельзя; их перед пользованием протирают
спиртом.
Разрабатывается и испытывается методика
стерилизации инструментов и перевязочных
материалов ионизирующим излучением,
которое обладает выраженным антимикробным
действием.
4.3.Подготовка операционного
поля.
Обработка операционного
поля включает в себя четыре основных
момента: удаление волосяного покрова,
механическую очистку с обезжириванием,
дезинфекцию (асептизация) поверхности
с дублением и изоляцию от окружающих
участков тела.
Волосяной покров выстригают
или сбривают. При механической очистке
и обезжиривании операционное поле протирают
тампоном или салфеткой, смоченной 0,5%-ным
раствором нашатырного спирта или спирт-эфиром
(поровну), можно чистым бензином и т. п.
Способов дезинфекции и дубления операционного
поля много. Так, по способу
Филончикова дубление осуществляется
двукратной обработкой операционного
поля 5%-ным спиртовым раствором йода, причем
интервал между обработками должен быть
не менее трех минут:
Rp.: Sol. Jodi spirituosae 5% - 20
ml
D. S. Наружное. Для двухкратной
дезинфекции и дубления обезжиренной
кожи операционного
поля
Способ Филончикова
По способу
Мыша операционное поле
трижды обрабатывают 5%-ным водным раствором
калия перманганата:
Rp.: Sol. Kalii permanganatis 5%
- 100 ml
D. S. Наружное. Для трехкратной
обработки и обезжиривания кожи
операционного поля
Способ Мыша
Эффективными средствами
для этих целей являются 1-3 %-ный раствор
поверхностно-активных антисептиков катапола
и этония. Обработка операционного поля
раствором фурацилина состоит в следующем.
Вначале удаляют волосяной покров. Механическую
очистку и обезжиривание кожи проводят
водным раствором фурацилина в концентрации
1:5000, дезинфекцию и дубление – спиртовым
раствором фурацилина в разведении 1:1500.
Каждый способ обработки
операционного поля заканчивается его
изоляцией от окружающих участков тела
простыней с прорезом в центре.
При отсутствии простыни
выстригают (выбривают) волосяной покров
на значительном участке кожи животного.
4.4Обработка рук хирурга
и операционных сестер.
Обработка кожи различными
антисептическими веществами является
ненадежной, так как слабые растворы антисептиков
не уничтожают микроорганизмы, а сильные
вызывают раздражение и воспалительные
явления кожи. С другой стороны, какими
бы сильнодействующими ни были антисептические
средства, они не могут воздействовать
на микробы, расположенные глубоко в коже.
Поэтому современные способы подготовки
рук к операции основаны на использовании
дубящих свойств антисептиков, которые
уплотняют верхние слои кожи и тем самым
закрывают кожные отверстия протоков
желез, преграждая на срок операции выход
из них микроорганизмов. Различают три
основных приема современной подготовки
рук к операции: а) механическая очистка,
б) химическая дезинфекция и в) дубление
кожи. Некоторые антисептические вещества
нередко совмещают в себе свойства бактерицидные
и дубящие (спиртовой раствор йода, раствор
бриллиантовой зелени и др.), представляя,
таким образом, бактерицидный дубитель
или дубящий антисептик. Обработку рук
ведут от кончика пальцев и далее до локтей.
Наиболее распространены
и пригодны для ветеринарной практики
следующие способы:
Способ Спасокукоцкого
– Кочергина – один из наиболее
популярных. Для механической очистки
и глубокого обезжиривания кожи применяют
свежеприготовленный 0,5%-ный раствор нашатырного
спирта в горячей воде. Руки моют поочередно
в двух тазах по 2,5 мин. или под текучей
струей с применением марлевой салфетки.
После повторного мытья жидкость в тазу
должна остаться прозрачной. Если этого
нет, руки моют еще раз. Дезинфекцию и дубление
кожи осуществляют следующим образом:
руки насухо обрабатывают 3 – 5 мин. смоченной
в этиловом спирте марлевой салфеткой,
а кончики пальцев, подногтевые пространства
и ногтевые ложа смазывают 5%-ным спиртовым
раствором йода. Во время операции при
загрязнении рук их моют вторично и повторяют
дубление спиртом.
^ Способ Кияшова. Руки механически
очищают и обезжиривают 0,5%-ным раствором
нашатырного спирта в течение 5 мин. Попеременно
в двух тазах или под струей, а затем обрабатывают
3 мин. под струей 3%-ным раствором цинка
сульфата, который обладает дубящим и
бактерицидным действием одновременно.
Кончики пальцев смазывают раствором
йода. Этот способ по простоте, надежности
и дешевизне является наиболее доступным
для ветеринарной практики.
Способ
Оливкова. После мытья и механической
обработки по одному из способов руки
дважды протирают тампоном, пропитанным
йодированным спиртом 1:3000.
4.5Стерилизация шовного материала
В настоящее время для швов применяют различные материалы: шелк, капрон, кетгут и т. д. Стерилизация этих материалов и их хранение требуют особой тщательности, поскольку, с одной стороны, при их изготовлении возможно загрязнение, а с другой — швы могут длительно оставаться в глубине операционной раны или вообще не рассасываться. Очень надежен способ стерилизации в водных растворах хлоргексидина биглюконата нерассасывающихся шовных материалов — нитей из шелка, синтетических материалов, льна. Этот способ позволяет стерилизовать нити, собранные в плотные бабины. Шовный материал в бабинах заливают эфиром на 1—2 сут (для обезжиривания) в зависимости от толщины нитей. После извлечения стерильными инструментами из эфира шовный материал перекладывают в стерильную банку и заливают 1 % водным раствором хлоргексидина биглюконата на 30 мин, затем бабины переносят в 2,5% раствор хлоргексидина, для приготовления которого используют дистиллированную воду, и кипятят в течение 5 мин. После этого шовный материал стерильными инструментами перекладывают в стерильные банки и заливают 96% спиртом на 3 сут. Затем спирт заменяют новым и проводят бактериологический контроль шовного материала на стерильность. Хранить шовный материал необходимо в спирте, который меняют каждые 10 дней. На время операции бабины закладывают в стерильные металлические коробки, в крышке которых имеется несколько отверстий для выведения конца нитей наружу. После операции бабины вновь переносят в 96% спирт. Бактериологические исследования нитей проводят каждые 10 дней. Результаты исследований регистрируются в специальном журнале, который хранится у старшей операционной сестры.
Шелк можно стерилизовать в паровом стерилизаторе. Этот способ надежен, по его применяют редко, так как при такой обработке он теряет присущую ему прочность.
Бумажные и льняные нити чаще стерилизуют паром под давлением вместе с перевязочным материалом. Прочность этих нитей при таком виде стерилизации не страдает. Капроновые нити можно стерилизовать кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин.
Стерилизация кетгута. Кетгут изготавливают из серозно-мышечного покрова кишок овец, и поэтому он может быть загрязнен различными бактериями, в том числе анаэробными и спорообразующими.
Наиболее распространен способ стерилизации по Губареву: моточки сухого кетгута заливают эфиром на 24 ч для обезжиривания. Затем стерильным инструментом кетгут перекладывают в стерильную банку и заливают спиртовым люголевским раствором (этиловый спирт 96% 1000 г, йодид калия 10 г, чистый йод 10 г) на 8—10 сут в зависимости от толщины нити (кетгут имеет номера от 0 до 6). Через 16—20 сут осуществляют контроль стерильности кетгута и при благоприятном результате начинают 'его использовать. Кетгут хранят в 96% этиловом спирте, который меняют через 10 дней, в банках темного цвета с притертой пробкой. Бактериологический контроль осуществляют каждые 10 дней.
В настоящее время кетгутовые нити готовят промышленным путем, при котором стерилизация осуществляется воздействием гамма-лучей. При этом материал стерилизуют в закрытых, запаянных ампулах, что гарантирует его длительную стерильность. Перед употреблением ампулы помещают в раствор сулемы (1:1000) на 1 ч или в другие антисептические растворы. Вскрывают ампулы перед непосредственным использованием шовного материала.