Эпизоотология

-align:justify">При вынужденном  убое вакцинированных животных в первые 10 дней после иммунизации мясо используют на общих основаниях после иссечения места инъекции. Через 10 дней после вакцинации убой животных и использование мяса разрешается без ограничений. Молоко от привитых коров также можно использовать.

Ежедневно в  помещениях, где находятся больные  животные, проводят механическую очистку, навоз и остатки корма подвергают обеззараживанию на территории навозохранилища.

После удовлетворительной механической очистки животноводческих помещений и выгулов для животных проводят текущую дезинфекцию каждые 10 дней, используя растворы фунгицидной концентрации:

4%-ный раствор  гидроокиси натрия;

щелочной  раствор формальдегида, содержащий 2% формальдегида и 1% гидроокиси натрия;

4%-ный раствор  парасода или фоспара. Норма расхода дезраствора в типовых помещениях — 1 л/м2 при экспозиции три часа. При дезинфекции почвы расход раствора — 5-10 л/м2. После дезинфекции помещения моют горячей водой и высушивают, по необходимости осуществляют дератизацию и дезинсекцию.

Осуществляя заключительную дезинфекцию рекомендуется использовать щелочной раствор формальдегида, а после трехчасовой экспозиции провести побелку перегородок, стен и др. 20% взвесью свежегашеной извести.

Лица, работающие с трихофитийным скотом, должны быть проинструктированы по технике личной безопасности, обеспечены спецодеждой, моющими средствами и необходимым инвентарем по уходу за животными.

Спецодежду  ежедневно после работы дезинфицируют  в пароформалиновой камере.

Хозяйство объявляют  благополучным через 2 месяца после  последнего случая выявления клинически больных животных.

 

3. Копытная гниль у овец и  коз, диагностика, методы лечения и меры борьбы.

  Копытная гниль (лат. — Poronychia contagiosa; англ. — Foot-rot) — в основном хроническая болезнь овец, реже коз, проявляющаяся воспалением кожи межкопытной щели, гнилостным распадом роговой ткани, отслоением рога копыт и, как следствие, хромотой.

Диагностика и дифференциальная диагностика

Первичный диагноз  на копытную гниль устанавливают  на основании эпизоотологических данных и клинических признаков. В стационарно  неблагополучных хозяйствах диагностику  проводят по клиническим признакам  болезни с учетом эпизоотологических данных. Окончательный диагноз подтверждается результатами лабораторных исследований.

Патологическим  материалом для лабораторных исследований служат пораженные копыта от вынужденно убитых животных или пораженные ткани  и соскобы, взятые из мест поражений  — межкопытной щели и копыт. В  лаборатории проводят бактериоскопическое  исследование (обнаруживают феномен  Бевериджа), люминесцентную диагностику (непря_т мой метод РИФ) и при необходимости биопробу на овцах (в затруднительных случаях) путем заражения их в кожу межкопытной щели. Бактериологическую диагностику копытной гнили (выделение культуры возбудителя) и серологические исследования не проводят.

Диагноз на копытную гниль считают установленным: 1) при обнаружении возбудителя  методом бактериоскопии в патологическом материале; 2) положительном результате РИФ; 3) положительной биопробе на овцах.

При дифференциальной диагностике в первую очередь  необходимо исключить некробактериоз. Для этого в лабораториях проводят заражение патологическим материалом белых мышей или кроликов.

Кроме того, с поражениями копыт и хромотой у овец могут протекать и другие инфекционные болезни: ящур, контагиозный пустулезный дерматит (контагиозная эктима), оспа, катаральная лихорадка  овец (блу-танг), дерматофилез, а также  вольфартиоз и заболевания неинфекционной природы (гнойное воспаление межпальцевой железы, намины и травмы копыт).

Иммунитет, специфическая профилактика

Естественный  иммунитет при копытной гнили  практически не вырабатывается, и  возможно повторное заболевание. Это  связано с тем, что поражения  копыт носят поверхностный характер, и возбудитель практически не вступает в контакт с иммунокомпетентными  клетками и органами. Тем не менее  при искусственной иммунизации  в организме вырабатываются специфические  антитела, ответственные за создание активного иммунитета. Факторы клеточного иммунитета также имеют значение.

В целом  из-за слабой иммуногенности возбудителя  копытной гнили поствакцинальный иммунитет  при данной болезни относителен  и непродолжителен. В нашей стране была создана первая отечественная инактивированная эмульгированная вакцина против копытной гнили овец ВИЭВ, которая ранее применялась в овцеводческих хозяйствах. В настоящее время вместо нее выпускается и используется инактивированная ассоциированная ГОА-вакцина против инфекционных болезней конечностей овец «Овикон».

Профилактика

Копытная  гниль — одна из тех болезней, при которых особенно трудно бороться с возникшей инфекцией. Мероприятия  по профилактике копытной гнили овец включают комплекс мер, к которым  относятся следующие.

1. Недопущение  заноса возбудителя болезни в  благополучное хозяйство.

С этой целью  необходимо приобретать овец в хозяйствах, благополучных по копытной гнили, с  обязательным профилактическим карантини-рованием всех вновь поступивших животных в течение 30 дней. В период карантина  перед переводом животных в основное стадо проводят осмотр копытец с  расчисткой и обрезкой копытного  рога и профилактическую обработку  конечностей в ножных ваннах.

2. Периодические  (не менее 2 раз в год) осмотр, обрезка и расчистка копытец  всего поголовья овец.

3. Мероприятия  по повышению естественной резистентности  животных.

4. Мероприятия  по улучшению условий содержания, препятствующие размягчению копытного  рога, и профилактика травматизма.

5. Недопущение  контакта овец благополучных  хозяйств с неблагополучными  отарами на пастбищах, местах  водопоя и т. д.

6. Профилактические  обработки конечностей в ножных  ваннах не менее 2 раз в год:  перед выгоном животных на  пастбище и перед постановкой  на стойловое содержание.

7. Профилактические  дезинфекции кошар, базов, инвентаря  и т. д.

Лечение

Для лечения  копытной гнили используют множество  средств

в основном для местного и реже для парентерального  применения.

Для обработки  копыт местно применяют 10%-ный раствор  сульфата цинка или 10...15%-ный раствор  сульфата меди, 5%-ный раствор парофор-ма или 10%-ный раствор формалина. Для местного лечения высокоэффективен 10%-ный спиртовой раствор левомицетина, а также аэрозоли антибиотиков — левомицетина, хлоромицетина, окситетрациклина и других при 2...3-кратном орошении пораженных тканей. Можно также орошать пораженные копыта раствором перманганата калия, серно-кар-боловой смесью, препаратом АСД (фракция 3) или смазывать эмульсиями (мазями) антибиотиков — пенициллина, окситетрациклина, биомицина, синтомицина и др. Применяют присыпки и порошки, содержащие антибиотики, и сульфаниламидные и комплексные препараты, в частности трициллин, перманганат калия со стрептоцидом, пароформ со стрептоцидом и другие средства. Накладывать повязки на копыта на срок более 1...2 дней нежелательно, так как это приводит к развитию гнилостной микрофлоры.

Хороший лечебный эффект, особенно при тяжелых  формах копытной гнили, дает парентеральное применение антибиотиков пенициллинового  или тетрациклинового ряда, особенно пролонгированных форм — бицил-лина-3,5, дибиомицина, дитетрациклина и других в больших дозах.

Меры  борьбы

При установлении диагноза на копытную гниль хозяйство (ферму, отару) объявляют неблагополучным, вводят ограничения и осуществляют мероприятия в соответствии с  действующими правилами (инструкцией), утвержденными Департаментом ветеринарии  МСХ РФ. Меры борьбы с копытной гнилью овец строятся на основе научно обоснованной системы, включающей комплекс мероприятий, проводимых в неблагополучном хозяйстве. Основными являются следующие.

1. Регулярные  клинические осмотры животных, расчистка  и обрезка копыт, удаление пораженных  тканей, изоляция больных и подозрительных  по заболеванию копытной гнилью  овец.

2. Вынужденная  иммунизация животных с профилактической  и лечебной целями.

3. Профилактические  и лечебные ванны для обработки  конечностей.

4. Лечение  больных овец или сдача на  убой не поддающихся лечению  животных.

5. Вынужденная  дезинфекция кошар, базов, инвентаря  и санация пастбищ.

6. Уничтожение  отходов, обеззараживание навоза.

7. Мероприятия  по повышению естественной резистентности  животных.

8. Мероприятия  по улучшению условий содержания  и профилактика травматизма.

9. Своевременный  отъем ягнят от матерей в  неблагополучных отарах в возрасте 3...4 мес.

Для ножных ванн при копытной гнили чаще всего  используют растворы формалина или  сульфата меди. В последние годы стали применяться также препараты  на основе сульфата цинка (в частности, «Цинкосол»).

 

Препараты, применяемые для ножных ванн при  копытной гнили овец

 

Препарат	Способ применения	Преимущества	Недостатки
Сульфат цинка (сернокислый цинк)	10%-ный раствор, неограниченно, оптимально 1 раз в 5...10 дней	Наиболее эффективен, обладает наибольшей проникающей способностью, длительно  сохраняет активность, не разрушает  живые ткани	Побочного действия не оказывает
Формалин (раствор формальдегида)	5... 10%-ный раствор (не более). Не чаще 1 раза в 7 дней, оптимально 1 раз  в 10 дней	Эффективен	Раздражение органов чувств. Слабое проникновение в ткани рога и  их деструкция. Опасность побочного дейст-
Сульфат меди (медный купорос)	10%-ный раствор, неограниченно, оптимально 1 раз в 5...10 дней	Действует аналогично сульфату цинка, но слабее, не разрушает живые ткани  копыт	Активность сильно снижается в  присутствии органических веществ. Вызывает коррозию металлических ванн. Может вызвать отравление при  приеме внутрь. Пачкает шерсть

 

Ветеринарно-санитарную оценку мяса и мясопродуктов от вынужденно убитых больных животных проводят в  соответствии с действующими Правилами  ветеринарно-санитарного осмотра  убойных животных и вете-ринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов. Молоко от условно здоровых животных разрешается принимать в пищу без ограничений, от больных —  после кипячения.

Хозяйство (ферму, отару) считают благополучным  по копытной гнили через 1 год после  последнего случая выздоровления или  убоя больных овец и проведения заключительных мероприятий.

4. Методы диагностики и меры  борьбы с инфекционной      анемией лошадей.

Инфекционная анемия лошадей (лат. — Anemia infectiosa equorum; англ. — Equine infectious anemia; ИНАН) — болезнь однокопытных, характеризующаяся поражением кроветворных органов, рецидивирующей лихорадкой, септическими явлениями, геморрагическим диатезом, анемией с уменьшением содержания гемоглобина и числа эритроцитов, ускоренным их оседанием, упадком сил и длительным вирусоносительством .

Диагностика и дифференциальная диагностика

Диагноз на ИНАН ставят комплексно. Учитывают  эпизоотологические особенности, результаты клинического, патологоморфологического, гематологического, серологического исследований и биологической пробы.

Для исследования в ветеринарную лабораторию направляют: сыворотку крови лошадей (5...6 мл) для серологического исследования; кровь, которую берут до поения и  кормления животного (10... 12 мл), стабилизированную 20%-ным раствором цитрата натрия, для гематологического исследования (табл. 5.14); кусочки печени, селезенки, почек, сердца, легких и лимфатических  узлов, взятых от павших или убитых с диагностической целью животных для гистологического исследования; сыворотку крови или дефибринированную кровь от подозрительных по заболеванию инфекционной анемией лошадей для постановки биологической пробы.

Серологический  метод диагностики основан на обнаружении антител к вирусу в сыворотке крови подозрительных по заболеванию лошадей путем  постановки реакции диффузной преципитации (РДП).

 

Сравнительные показатели крови здоровых и больных лошадей

 

Гематологические показатели   Эритроциты, млн/мкл  Гемоглобин, г% СОЭ, мм/ч

Здоровые лошади нормальной упитанности От 5 до 9 7,6 45...60

Лошади, больные инфекционной анемией 4,5 и ниже  5,0 и ниже  66 и более

 

Гематологические  исследования включают определение  числа эритроцитов в 1 мкл крови, содержания гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

Для гистологического исследования готовят срезы и  окрашивают их гематоксилином и эозином  и по Перл су (для обнаружения  гемосидерина). Наиболее характерные  изменения в капиллярах и клетках  печени и селезенки: скопление гистиоцитов, макрофагов, лимфоидных клеток и гемосидерина.