Для изготовления препаратов
зубов последние удаляют из альвеол челюстей.
Особую сложность для извлечения представляют
многокорневые зубы и зубы с искривленными
корнями. Удаление их осуществляют бормашиной с
применением твердосплавных боров и алмазных
сепарационных дисков, которыми распиливают
стенки альвеол. Препараты шлифов зубов
удобно получать, используя двух- и односторонние
алмазные сепарационные диски.
Для изучения синтопии внутренних органов
можно использовать изготовление распилов
за-мороженных трупов по методу Н.И. Пирогова
(1851-1859). Кровеносные сосуды внутренних
орга-нов инъецируют цветными застывающими
индикаторами. Для этого рекомендуют использовать
20 % водный раствор столярного клея, смешанного
с различными водными красками (Т.В. Богуслав-ская,
1959). После этого труп помещают в морозильную
камеру с температурой минус 20 градусов
по Цельсию. При этом туловище рекомендуют
поместить на деревянную доску с ватной
подстил-кой. Распилы туловища для иллюстрации
внутренних органов лучше производить
электропилой с интервалами в 2-3 см. Поверхность
распила очищают от опилок. Срез укладывают
на стекло и устанавливают в прозрачную
ёмкость с фиксирующей жидкостью для экспозиции.
С целью изготовления препаратов, иллюстрирующих
синтопию внутренних органов на кафедре
анатомии человека ВМА предложена модификация
метода распила замороженных трупов «вылущивание»
замороженных органов. Удаленные путем
вылущивания из замороженной брюшной
полости орган, оставляет «ложе» с отпечатками
его к окружающим органам. Показательны
препараты кровеносных сосудов внутренних
органов. Для иллюстрации кровеносных
сосудов кишки человека и животных рекомендуют
наливку их застывающими массами (киноварь,
берлинская лазурь в эфире и другие) с
последующим приготовлением просветленных
препаратов. Среди различных вариантов
метода просветления можно отметить способ,
включаю-щий следующие этапы: фиксация
формалином; отбеливание в перекиси водорода;
промывание в воде (вначале в проточной,
затем выдерживание в дистиллированной
воде в течение двух суток); обезвоживание
в спиртах возрастающей концентрации
(75%, 85%, 96%, абсолютный спирт); про-светление
в растворах глицерина в воде возрастающей
концентрации (1:2, 1:1,2:1).
Для изучения функциональной анатомии
тонкой кишки можно продемонстрировать
резорбцию жиров из тонкой кишки в её лимфоносное
русло и регионарные лимфатические узлы.
Нами 121 предложена методика позволяющая
приготовить соответствующие анатомические
препараты экспериментальных животных.
Смесь Судана IV (2,0 г) с подсолнечным маслом
(100,0 г) кипятится на водяной бане до образования
темно-красной прозрачной жидкости. При
температуре 37-40 градусов эта жидкость
объёмом 5-25 мл (в зависимости от массы
животного) вводится через полиэтиленовый
зонд в свободный от содержимого желудочно-кишечный
тракт животного (кошка, крыса, кролик).
Через 4 часа на вскрытии видны ярко-красные
тяжи лимфатических сосудов тонкой кишки
и такого же цвета брыжеечные лимфатические
узлы. Препарат, иллюстрирующий функциональную
анатомию тонкой кишки, помешается в раствор,
содержащий диметилфосфит. Ветвление
бронхиального дерева, сосуды внутренних
органов можно показать на коррозион-ных
препаратах. В качестве инъекционной массы
применяют самые разнообразные материалы,
включая целлоидин, клей БФ-2, канифоль,
воск. Наиболее употребительно методика
приготовления коррозионных препаратов
с использованием латекса. Для этого латекс
набирают в шприц, предварительно смоченный
мыльной пеной, чтобы предупредить коагуляцию
его в шприце. Содержимое шприца вводят
в исследуемые полости. Если речь идет
о кровеносном русле органа, последнее
заранее промывают водой с добавлением
0,2%¾0,3% раствор аммиака. Инъецированный
орган на несколько дней (от 2 до 5 дней
в зависимости от размеров препаратов)
погружают в концентрированный раствор
соляной кислоты. Готовый слепок исследуемых
анатомических образований промывают
водой, которую используют и для сохранения
препарата. Для уяснения закономерностей
анатомии внутренних органов целесообразно
изготовление моделей нативных препаратов
из пластилина, пластики, папье-маше, мыла
и других материалов. При моделировании
зубов применяют воск, мел, гипс, дерево.
Моделирование зубов проводят по оригинальным
образцам. Для репродукции в качестве
прототипов используют натуральные анатомические
препараты или макеты зубов (фантомы).
Масштаб выбирают произвольным. Удобным
и апробированным практикой является
двух- или трехкратное увеличение. Техника
моделирования зубов изложена нами в специальном
руководстве (С.В. Дмитриенко с соавт.,
1998). Модели печени, легких, почек и других
паренхиматозных органов лучше изготавливать
из папье-маше, которое затем окрашивают
гуашью или акварельными красками в цвета,
соответствующие натуральным препаратам.
На поверхности этих органов можно показать
границы между сегментами печени, лёгких,
почек.
Учение о
внутренних органах (спланхнология). Теоретическая
анатомия внутренних органов.
Системы обеспечения
движений. Пищеварительная, дыхательная,
мочеполовая, сердечно – сосудистая и
лимфатическая система человека. Функции
органов систем обеспечения, их функциональная
взаимосвязь и адаптация к физическим
нагрузкам.
Общая характеристика
внутренних органов и их функциональное
значение. Полости тела и расположение
органов в них. Классификация внутренних
органов. Общий план
строения стенки полых органов. Соединительнотканный
слой и его строение в связи с местоположением
органа. Висцеральный и париетальный листки
серозной оболочки. Расположение и строение
мышечного слоя. Механизм перистальтики.
Слизистая оболочка, зависимость ее строения
от функции организма. Лимфоидные образования
слизистой оболочки и их значение. Адвентиция.
Строение паренхиматозных органов, их
подразделение на доли, сегменты, дольки.
Список литературы
1. Н.И. ГОНЧАРОВ,
"РУКОВОДСТВО ПО ПРЕПАРИРОВАНИЮ И ИЗГОТОВЛЕНИЮ
АНАТОМИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ"
2.Интернет
ресурсы: http://www.refsru.com/referat-6040-2.html