Кастрация хряков

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 10 Июня 2014 в 19:30, курсовая работа

Краткое описание

Опухоли кишечника и желудка, различные нарушения перистальтики (вплоть до пареза кишечника) - все это представляет опасность. Самостоятельное заболевание - заворот желудка - тоже вызывает непроходимость.Однако все описанные выше случаи встречаются сравнительно редко. Основной причиной непроходимости все-таки являются инородные предметы, которые проглатывает собаки. Что только не находят хирурги в ходе операций: начиная от обрывков резиновых и пластиковых игрушек и кончая строгим ошейником (!) вместе с поводком. Большое количество животных попадает на операционный стол в период новогодних елок. Мишура - традиционное украшение зимнего праздника - будучи проглоченной, очень часто вызывает нарушения перистальтики кишечника, что во многих случаях ведет к гибели животного

Содержание

Введение
Определение операций и показание к ней. Этиология, симптоматика, диферинциальный диагноз, профилактика.
Топографическая анатомия оперируемой области и органа
Подготовка к операции.
4.1 подготовка животного
4.2 инструментарий и его стерилизация, стерилизация шприцов и игл
4.3 подготовка операционного поля
4.4 подготовка рук хирурга
4.5 стерилизация шовного материала
4.6 стерилизация перевязочного материала, хирургического белья, предметов хирургического обихода
4.7 правила работы в операционной, личная гигиена ветеринарного специалиста
5. Фиксация животного
6. Обезболивание
7. План и техника операции (оперативный доступ, оперативный прием, остановка кровотечений, заключительная часть операции)
8. Послеоперационное содержание
9. Заключение( обсуждение, вывод, рекоминдация владельцу животного)
10. Экономическая эфективность оперативного вмешательства
11.Список литературы

Вложенные файлы: 1 файл

хирургия курсовая (2).docx

— 201.88 Кб (Скачать файл)

Рис. 62

Топография органов брюшной полости. Вентральная" поверхность (по Б. Біввоп. 1967, с изменениями и дополнениями)

1 — печень; 2 —  желудок; 3 — левая почка; 4 — яичники; 5 — рога матки; 6 — селезенка; 7 — матка; 8 — мочевой пузырь; 9 — ободочная кишка; 10 — двенадцатиперстная  кишка; 11 — подвздошная кишка; 12 —  слепая кишка.

Рис. 67

Схема подразделения кишечника на отделы

1 — пищевод; 2 — желудок; 3 — двенадцатиперстная кишка; 4 —  поджелудочная железа; 5 — тощая  кишка; 6 — подвздошная кишка; 7 —  слепая кишка; 8 — восходящее колено  ободочной кншки; 9 — поперечное  колено ободочной кишки; 10 — нисходящее  колено ободочной кишки; 11 — ампула  прямой кишки; 12 — аиус.

Топография кишечника (вид справа) (по S. Sisson, 1967, с изменениями и дополнениями)1 — прямая кишка; 2 — влагалище; 3 — вульва; 4 — мочевой пузырь; 5 — ободочная кишка; 6 — мочеточник; 7 — тонкий кишечник; 8 — слепая кишка; 9 — яичник; 10 — рог матки; 11 — правая почка; 12 — поджелудочная железа; 13 — двенадцатиперстная кишка; 14 — печень; 15 — каудальная доля легкого; 16 — средняя доля легкого; 17 — перикард; 18 — краниальная доля легкого.

 

4.Подготовка к  операции.

4.1 подготовка животного

 

 Благоприятный исход оперативного вмешательства зависит не только от общего состояния животного, характера (тяжести) заболевания и качества выполнения операции, но и от полноценности предоперационной подготовки животного. 
В комплекс мер по подготовке животного к операции включают: 1) всестороннее изучение больного животного и ознакомление с эпизоотической обстановкой хозяйства, из которого доставлено животное на излечение; 2) устранение сопутствующих заболеваний, затрудняющих выполнение операции, и применение средств, повышающих защитные силы у больного животного; 3) назначение диеты, соответствующего режима содержания и зоогигиенического ухода за животными (чистка кожного покрова, частичное или полное обмывание животного, расчистка копыт и т. п.). 
Применяют эти меры с учетом общего состояния больного животного, характера его заболевания и тяжести предстоящей операции. В тех случаях, когда общее состояние животного хорошее и операция легкая, ограничиваются проведением лишь некоторых из указанных мероприятий; при тяжелых операциях, наличии сопутствующих болезней применяют весь комплекс мер предоперационной подготовки животного. 
Основным условием правильной подготовки животного к оперший является всестороннее изучение его. В этих целях провопи полное клиническое и лабораторное (анализ крови, мочи, кала) исследования. Они имеют целью выяснить, не поражено ли животное заразной болезнью, а также выявить возможные нарушения работы сердца, легких, кишечника и пр., своевременное распознавание которых позволяет предупредить осложнения, связанные с проведением операции. 
На основании результатов исследования устанавливают показания и противопоказания к операции, определяют допустимость применения того или иного способа обезболивания, фиксации животного. 
При обнаружении исследованием сопутствующих заболевании, затрудняющих выполнение операции, животное подвергат лечению. Так, например, при наличии в участке операции затёков гноя последний предварительно удаляют, а образовавшиеся  заточные карманы, полости, свищевые ходы промывают и дезинфицирующими   растворами;   при   пониженной свертываемости крови переливают совместимую кровь; при пониженной сопротивляемости организма стимулируют его защитные силы путем усиленного питания, тканевой терапии, переливания крови, аутогемотерапии и пр. 
Чтобы избежать возможных разрывов кишечника и мочевого пузыря, животному перед операцией, сопровождающейся повалом и применением наркоза, назначают голодную диету продолжительностью от 6 до 24 ч и дают только воду. Непосредственно перед операцией опорожняют мочевой пузырь и прямую кишку. С этой целью делают пяти- или десятиминутную проводку животного или применяют мочевой катетер и ставят клизму.

4.2Стерилизация хирургических инструментов

 

Стерилизация инструментов – первый шаг на операции. Инструменты можно стерилизовать, кипячением (основной способ), обжиганием (фламбирование) и антисептическими растворами (химическая стерилизация). 
Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления. 
Стерилизация кипячением. Для стерилизации инструментов пользуются простым  стерилизатором,  для подогрева которого используют любой источник тепла (примус, газовую плиту, электроплитку и т. д.), или электрическим. При отсутствии стерилизатора используют любую эмалированную посуду с крышкой. 
Стерилизатор представляет собой продолговатую металлическую коробку с крышкой и вставной сеткой с ручками, за которые ее удерживают крючками при извлечении инструментов из кипящей воды. 
При работе с электрическими стерилизаторами следят за исправностью проводов, штепсельной вилки и розетки, а также не допускают затекания воды в нагревательный элемент. Стерилизатор ставят на огнеупорный материал. 
Для стерилизации инструментов кипячением в стерилизатор наливают необходимое количество воды  и добавляют 0,25% гидроокиси натрия или 2% карбоната натрия. Указанные растворы щелочей, осаждая углекислые соли кальция и магния, предохраняют инструменты от ржавчины. Раствор доводят до кипения и через 3 – 5 мин с момента его закипания в стерилизатор погружают сетку с предварительно разложенными на ней инструментами. В холодную воду инструмент класть нельзя, так как выделяющийся при нагревании ее кислород быстро окисляет металл. 
Продолжительность стерилизации инструментов 15-20 мин; время отсчитывают от момента закипания раствора после погружения в него сетки с инструментами. По истечении указанного срока сетку извлекают из стерилизатора и, как только стечет с инструментов вода, их раскладывают на стерильном инструментальном столике, тазике или оставляют в стерилизаторе, предварительно вылив из него воду. 
Инструменты после операции моют щеткой в проточной воде, кипятят в 2%-ном растворе бикарбоната натрия, вытирают, слегка смазывают (только замок) вазелиновым маслом и убирают в инструментальный шкаф. Продолжительность кипячения инструментов после асептических операций 15 мин, а после гнойных  – 45 мин. Инструменты, загрязненные анаэробными микробами (возбудители газовой гангрены, столбняка, некробациллеза и др.), кипятят с небольшими перерывами 2-3 раза по 30 мин. 
Стеклянные приборы (шприцы, мензурки, пробирки и др.) стерилизуют отдельно от металлических инструментов в дистиллированной, дождевой или прокипяченной воде без добавления щелочей. Шприцы кипят обязательно в разобранном виде, так как они могут лопнуть вследствие разницы в коэффициенте расширения при нагревании стеклянного цилиндра и металлического поршня. Перед кипячением составные части шприца, и другие стеклянные предметы предварительно обвертывают марлей и опускают в еще не нагретую воду. Продолжительность стерилизации стеклянных предметов 15 мин. Шприцы Жанэ, кроме того, можно стерилизовать в автоклаве. 
Резиновые предметы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин пли в автоклаве. 
Стерилизация обжиганием. Этим способом обычно стерилизуют крупные инструменты и эмалированную посуду. Другие инструменты стерилизуют обжиганием редко, преимущественно при неотложных операциях, когда нет времени для стерилизации кипячением. Инструменты кладут в эмалированный тазик или стерилизатор, обливают небольшим количеством (10 мл) спирта и равномерно обжигают. Стерилизация обжиганием недостаточно надежна. Кроме того, при обжигании сильно портятся инструменты, особенно режущие. 
Химическая стерилизация. Для химической стерилизации инструменты погружают в один из следующих антисептических растворов: 1) жидкость Каретникова (формалин – 20 г, кислота карболовая – 3 г, натрия карбонат- 15 г, вода дистиллированная- 1000 мл) -на 30 мин; 2) 3 – 5%-ный раствор кислоты карболовой – на 30 или 60 мин; 3) раствор бактерицида 1:3000 – на 10 мин; 4) 1%-ный спиртовой раствор бриллиантового зеленого на 15 мин; 5) 0,5%-ный спиртовой раствор формалина; 6) раствор фурацилина 1:5000. 
Химическая стерилизация инструментов применяется в случаях, когда по каким-либо причинам нет возможности прокипятить их или если они от кипячения портятся. 
Оптические инструменты (цистоскопы, ларингоскопы и др.) стерилизуют погружением в спирт на 10 мин, а затем переносят г. раствор основной цианистой ртути (1:1000) на 15 мин. Окуляры в химические растворы погружать нельзя; их перед пользованием протирают спиртом. 
Разрабатывается и испытывается методика стерилизации инструментов и перевязочных материалов ионизирующим излучением, которое обладает выраженным антимикробным действием.

 

4.3.Подготовка операционного поля. 
 
Обработка операционного поля включает в себя четыре основных момента: удаление волосяного покрова, механическую очистку с обезжириванием, дезинфекцию (асептизация) поверхности с дублением и изоляцию от окружающих участков тела. 
 
Волосяной покров выстригают или сбривают. При механической очистке и обезжиривании операционное поле протирают тампоном или салфеткой, смоченной 0,5%-ным раствором нашатырного спирта или спирт-эфиром (поровну), можно чистым бензином и т. п. Способов дезинфекции и дубления операционного поля много. Так, по способу Филончикова дубление осуществляется двукратной обработкой операционного поля 5%-ным спиртовым раствором йода, причем интервал между обработками должен быть не менее трех минут: 
 
 
Rp.: Sol. Jodi spirituosae 5% - 20 ml 
 
D. S. Наружное. Для двухкратной дезинфекции и дубления обезжиренной  
 
кожи операционного поля 
 
Способ Филончикова  
 
 
По способу Мыша операционное поле трижды обрабатывают 5%-ным водным раствором калия перманганата: 
 
 
Rp.: Sol. Kalii permanganatis 5% - 100 ml 
 
D. S. Наружное. Для трехкратной обработки и обезжиривания кожи  
 
операционного поля 
 
Способ Мыша 
 
 
Эффективными средствами для этих целей являются 1-3 %-ный раствор поверхностно-активных антисептиков катапола и этония. Обработка операционного поля раствором фурацилина состоит в следующем. Вначале удаляют волосяной покров. Механическую очистку и обезжиривание кожи проводят водным раствором фурацилина в концентрации 1:5000, дезинфекцию и дубление – спиртовым раствором фурацилина в разведении 1:1500. 
 
Каждый способ обработки операционного поля заканчивается его изоляцией от окружающих участков тела простыней с прорезом в центре. 
 
При отсутствии простыни выстригают (выбривают) волосяной покров на значительном участке кожи животного.

4.4Обработка рук хирурга и операционных сестер. 
 
Обработка кожи различными антисептическими веществами является ненадежной, так как слабые растворы антисептиков не уничтожают микроорганизмы, а сильные вызывают раздражение и воспалительные явления кожи. С другой стороны, какими бы сильнодействующими ни были антисептические средства, они не могут воздействовать на микробы, расположенные глубоко в коже. Поэтому современные способы подготовки рук к операции основаны на использовании дубящих свойств антисептиков, которые уплотняют верхние слои кожи и тем самым закрывают кожные отверстия протоков желез, преграждая на срок операции выход из них микроорганизмов. Различают три основных приема современной подготовки рук к операции: а) механическая очистка, б) химическая дезинфекция и в) дубление кожи. Некоторые антисептические вещества нередко совмещают в себе свойства бактерицидные и дубящие (спиртовой раствор йода, раствор бриллиантовой зелени и др.), представляя, таким образом, бактерицидный дубитель или дубящий антисептик. Обработку рук ведут от кончика пальцев и далее до локтей. 
 
Наиболее распространены и пригодны для ветеринарной практики следующие способы: 
 
 Способ Спасокукоцкого – Кочергина – один из наиболее популярных. Для механической очистки и глубокого обезжиривания кожи применяют свежеприготовленный 0,5%-ный раствор нашатырного спирта в горячей воде. Руки моют поочередно в двух тазах по 2,5 мин. или под текучей струей с применением марлевой салфетки. После повторного мытья жидкость в тазу должна остаться прозрачной. Если этого нет, руки моют еще раз. Дезинфекцию и дубление кожи осуществляют следующим образом: руки насухо обрабатывают 3 – 5 мин. смоченной в этиловом спирте марлевой салфеткой, а кончики пальцев, подногтевые пространства и ногтевые ложа смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Во время операции при загрязнении рук их моют вторично и повторяют дубление спиртом. 
 
^ Способ Кияшова. Руки механически очищают и обезжиривают 0,5%-ным раствором нашатырного спирта в течение 5 мин. Попеременно в двух тазах или под струей, а затем обрабатывают 3 мин. под струей 3%-ным раствором цинка сульфата, который обладает дубящим и бактерицидным действием одновременно. Кончики пальцев смазывают раствором йода. Этот способ по простоте, надежности и дешевизне является наиболее доступным для ветеринарной практики. 
 
Способ Оливкова. После мытья и механической обработки по одному из способов руки дважды протирают тампоном, пропитанным йодированным спиртом 1:3000.

4.5Стерилизация шовного  материала


 

В настоящее время для швов применяют различные материалы: шелк, капрон, кетгут и т. д. Стерилизация этих материалов и их хранение требуют особой тщательности, поскольку, с одной стороны, при их изготовлении возможно загрязнение, а с другой — швы могут длительно оставаться в глубине операционной раны или вообще не рассасываться. Очень надежен способ стерилизации в водных растворах хлоргексидина биглюконата нерассасывающихся шовных материалов — нитей из шелка, синтетических материалов, льна. Этот способ позволяет стерилизовать нити, собранные в плотные бабины. Шовный материал в бабинах заливают эфиром на 1—2 сут (для обезжиривания) в зависимости от толщины нитей. После извлечения стерильными инструментами из эфира шовный материал перекладывают в стерильную банку и заливают 1 % водным раствором хлоргексидина биглюконата на 30 мин, затем бабины переносят в 2,5% раствор хлоргексидина, для приготовления которого используют дистиллированную воду, и кипятят в течение 5 мин. После этого шовный материал стерильными инструментами перекладывают в стерильные банки и заливают 96% спиртом на 3 сут. Затем спирт заменяют новым и проводят бактериологический контроль шовного материала на стерильность. Хранить шовный материал необходимо в спирте, который меняют каждые 10 дней. На время операции бабины закладывают в стерильные металлические коробки, в крышке которых имеется несколько отверстий для выведения конца нитей наружу. После операции бабины вновь переносят в 96% спирт. Бактериологические исследования нитей проводят каждые 10 дней. Результаты исследований регистрируются в специальном журнале, который хранится у старшей операционной сестры.

Шелк можно стерилизовать в паровом стерилизаторе. Этот способ надежен, по его применяют редко, так как при такой обработке он теряет присущую ему прочность.

Бумажные и льняные нити чаще стерилизуют паром под давлением вместе с перевязочным материалом. Прочность этих нитей при таком виде стерилизации не страдает. Капроновые нити можно стерилизовать кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин.

Стерилизация кетгута. Кетгут изготавливают из серозно-мышечного покрова кишок овец, и поэтому он может быть загрязнен различными бактериями, в том числе анаэробными и спорообразующими.

Наиболее распространен способ стерилизации по Губареву: моточки сухого кетгута заливают эфиром на 24 ч для обезжиривания. Затем стерильным инструментом кетгут перекладывают в стерильную банку и заливают спиртовым люголевским раствором (этиловый спирт 96% 1000 г, йодид калия 10 г, чистый йод 10 г) на 8—10 сут в зависимости от толщины нити (кетгут имеет номера от 0 до 6). Через 16—20 сут осуществляют контроль стерильности кетгута и при благоприятном результате начинают 'его использовать. Кетгут хранят в 96% этиловом спирте, который меняют через 10 дней, в банках темного цвета с притертой пробкой. Бактериологический контроль осуществляют каждые 10 дней.

В настоящее время кетгутовые нити готовят промышленным путем, при котором стерилизация осуществляется воздействием гамма-лучей. При этом материал стерилизуют в закрытых, запаянных ампулах, что гарантирует его длительную стерильность. Перед употреблением ампулы помещают в раствор сулемы (1:1000) на 1 ч или в другие антисептические растворы. Вскрывают ампулы перед непосредственным использованием шовного материала.

4.6Стерилизация перевязочного материала и хирургического белья

Хирургическое белье и перевязочный материал стерилизуют, как правило, в автоклаве в биксах (коробках Шиммельбуша). При этом необходимо следить за тем, чтобы сверху лежал тот материал, который требуется раньше всего при операции; можно заполнять каждый бикс только одним видом перевязочного материала, например, компрессами и бинтами, салфетками, ватно-марлевыми шариками, ватой и т. п., что исключает необходимость перебирать материал руками и устраняет опасность его загрязнения. При укладке в биксы его сначала выстилают простыней, а затем кладут последовательно простыни для изоляции поля операции, простыни для инструментального столика, халаты, полотенце и, наконец, хирургические колпаки и маски. Перед помещением биксов в автоклав открывают боковое отверстие в боковых стенках и плотно закрывают крышкой. При отсутствии биксов можно воспользоваться импровизированными проволочными коробками, обтянутыми полотном.

Техника и правила работы с автоклавом

К работе с автоклавом допускаются лица, прошедшие специальное обучение и имеющие удостоверение.

В автоклав наливают горячую или холодную воду до отметки по водомерной трубе. Кладут в котел автоклава заряженные коробки Шиммельбуша (с открытыми боковыми отверстиями), а затем завинчивают наглухо крышку. Открывают пароотводный кран, соединяющий внутренний котел с внешней средой и нагревают автоклав. Когда температура поднимется до 100°С и вода закипит, через открытый кран начинают выделяться водяные пары. Кран оставляют открытым до тех пор, пока пар не сделается сухим, о чем можно судить по ощущению, испытуемому от выходящего пара рукой, а также по его сизоватому оттенку. Тогда кран закрывают и продолжают нагревать автоклав. Когда давление пара повысится до 1 атмосферы, снова открывают кран и выпускают пар до тех пор, пока давление пара в автоклаве не станет равным нулю. Это делается с целью удаления воздушных карманов из стерилизуемого материала и в замещении их водяными парами. После освобождения полости автоклава от воздуха закрывают паровоздушный кран и повышают давление до необходимой величины. Режимы стерилизации зависят от давления. При 2 атмосферах стерилизуют 20 минут (Т°-132,9°С), при 1,5 атмосферах — 30 минут (Т - 126,8°С). Проводить стерилизацию выше 2 атмосфер не следует, поскольку снижается прочность перевязочного материала, и он легко рвется.

Информация о работе Кастрация хряков