Отчет по практике в хозяйстве Новониколаевского ветеринарного участка

 

     3. В  данной лаборатории имеется следующее  оборудование:

-термостат ТС-80М-2

-автоклав

-сушильный шкаф

-центрифуга

- световой микроскоп

- люминистентный микроскоп

-предметные стекла, краски, чашки Петри, пинцеты и другой  инструментарий

- бокс

- бактерицидная лампа

- дезбарьеры (у входа во вскрывочную, виварий, саму лабораторию и каждый из ее отделов)

 

4. В лаборатории  применяются следующие методы  стерилизации:

1.Стерилизация кипячением. Стерилизуют шприцы, мелкий хирургический  инструмент, предметные стекла и  другие предметы. Кипятят не менее  30 минут.

2.Стерилизация сухим жаром  в сушильном шкафу. Сухим жаром  стерилизуют стеклянную посуду.

3.Стерилизация в автоклаве  паром под давлением.

4.Стерилизация в автоклаве  текучим паром. Применяется для  стерилизации питательных сред.

 

5. Правила приема пат.материала и внутренний распорядок лаборатории.

В качестве патологического  материала или материала для  исследования в лабораторию присылаются  кровь (для серологических исследований), трупы животных, органы павших или  вынужденно убитых животных, чаще это печень, селезенка, лимфатические узлы, головной мозг или целиком голову, а также различные истечения.

Поступающие на исследование в лабораторию материалы принимает  ветеринарный врач или лаборант, прошедший  инструктаж по технике безопасности в отделе бактериологической диагностики.

Пат. материал освобождают от наружной упаковки, сверяют с сопроводительной и записывают во входящий журнал лаборатории под очередным номером экспертизы. Такой же номер ставят тушью или восковым карандашом на посуде с материалом.

Если содержимое посылки  соответствует сопроводительной, после  регистрации его передают во вскрывочную. При обнаружении несоответствия между поступившими пробами и списком на них в сопроводительной или порчи патматериала составляют акт, копию которого пересылают отправителю.

Внутренний распорядок лаборатории.

1. Лаборатория работает с 8.00 до 16.00
2. Перерыв на обед с 12.00 до 13.00
3. В выходные и праздничные дни в лаборатории обязательно присутствует дежурный сотрудник.
4. Сотрудники обязательно должны пройти инструктаж по технике безопасности.

Вход в лабораторию  посторонним лицам – запрещен.

 

 

 

 

7. Отчет по курсу оперативной хирургии

 

1. Подготовка рук  хирурга. Поскольку руки ветеринарного врача постоянно соприкасаются с объектами, загрязненными микроорганизмами, то подготовка рук перед операцией имеет важное значение.

Обработка рук хирурга  состоит из трех этапов: 1) механическая очистка; 2) обработка антисептическими и 3) дубление кожи.

Руки готовят по одному из перечисленных способов:

• способ Оливкова. Руки сначала моют в течение 5 мин горячей водой (40—50°С) щеткой с мылом. После этого вытирают насухо грубым полотенцем и обрабатывают в течение 3 мин тампонами, смоченными спиртовым раствором йода 1:3000. Дополнительно подногтевые пространства и ногтевые ложа обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода.

При гнойных операциях  повторную обработку следует проводить йодированным спиртом в разведении 1:1000;

Таким способом обрабатывала руки перед кастрацией хряка (26.07.2006г)

• способ Спасокукоцкого—Кочергина. Руки моют в двух тазиках с 0,5%-ным раствором аммиака в течение 5 мин. Затем вытирают полотенцем и обрабатывают 70°-ным спиртом 5 мин. Подногтевые пространства обрабатывают 5% -ным раствором йода;

Этот способ применяла  перед кастрацией хрячков (27.07.06г)

• способ Кияшова основан на использовании 0,5% -ного раствора аммиака, в котором руки моют щетками 5 мин и вытирают полотенцем. Завершают подготовку рук обработкой 3% -ным раствором сульфата цинка в течение 3 мин, а подногтевые пространства и ногтевые ложа — дополнительно 5%-ным раствором йода.

 

 

 

2. Стерилизация  инструментов, белья и шовного  материала.

Стерилизация  шовного материала.

Стерилизация  шелка. Нити предварительно мыла и тщательно споласкивала, затем рыхло наматывала на предметные стекла и обрабатывала по способу Садовского. Мотки шелка помещают на 15 мин в 0,5%-ный раствор нашатырного спирта, а затем на 15 мин в 2%-ный раствор формалина, приготовленного на 70% -ном спирту.

Стерилизацию  кетгута проводится по способу Губарева. Кетгут помещала на 72 ч в 4% -ный водный раствор формалина.

Стерилизация  хлопчатобумажных и льняных нитей.

Эти нити обладают меньшей  прочностью, чем шелковые. Обычно пользуются нитями № 10—20, которыми зашивают дефекты кожи, при шве на внутренних органах применяют более тонкие номера. Стерилизовала хлопчатобумажные и льняные нити путем погружения на 24 ч в 4%-ный раствор формалина.

Стерилизация  перевязочного материала, хирургического белья и посуды осуществляются автоклавированием. Продолжительность стерилизации зависит от показаний манометра: при 1 атм./126,8° — 30 мин, при 2атм./132,9° — 20 мин.

Стерилизацию  текучим паром осуществляют либо в специальном текучепаровом стерилизаторе Коха, либо используют кастрюлю или ведро с крышкой (поскольку аппарата Коха в наличии не было использовала эмалированную кастрюлю с крышкой). Продолжительность стерилизации не менее 30 мин.

Стерилизация  утюжением белья и перевязочного материала допускается только в тех случаях, если нельзя применить другие способы. Температура утюга 150градусов; сначала раскладывала простыню и тщательно ее проглаживала, затем обрызгивала водой необходимый материал и проглаживала его с обеих сторон (марлю с одной стороны), на этой, предварительно проглаженной простыне, при этом утюг продвигала медленно по 2-3 раза на одном месте. Утюженное белье стерильным тампоном складывала в бикс или в пакет.

 

Бикс.

Стерилизация  хирургических инструментов. Существуют холодные и горячие способы стерилизации инструментов. К горячим относят стерилизацию кипячением в воде, фламбирование и др.; к холодным — стерилизацию в тройном растворе Каретникова, другие прописи, диацид, пливасепт и пр.

При прохождении практики использовала следующие методы стерилизации инструментов:

Стерилизация  кипячением в воде. Проводят ее в стерилизаторах (или эмалированной посуде). Вымытые инструменты, шприцы, иглы и др. кипятят 30 мин в дистиллированной или кипяченой воде.

Для повышения эффекта  стерилизации инструменты кипятят  в 3%-ном растворе двууглекислой соды или в 0,25%-ном растворе едкого натрия 10—15 мин.

Холодный способ стерилизации в тройном растворе Каретникова. Раствор состоит из 20 г формалина, 3 г фенола и 1 л дистиллированной воды. Экспозиция —30 мин.

Предварительная (заблаговременная) стерилизация инструментов. Для экстренных операций необходимо заранее простерилизовать инструменты. Предварительную стерилизацию осуществляла по способу Андреева. Инструменты складывают в двухслойный полотняный мешочек, который туго завязывают и опускают в кипящий 20%-ный раствор углекислой соды на 15 мин (считая с момента второго закипания раствора). После этого мешочек извлекала, подвешивала для стекания раствора и высушивания.

Кипячение инструментов в 20%-ном  растворе углекислой соды без последующего их протирания не вызывает коррозии. Инструменты сохраняют стерильность несколько месяцев.

 

3. Анестезия.

При прохождении практики при кастрации быка его фиксируют в стоячем положении и ему внутривенно инъецируют смешанный спирт-хлоралгидратный раствор из расчета: 50 мл 33%-ного этилового спирта и 7 г хлоралгидрата на 100 кг массы животного. Хлоралгидрат вводят в 10%-иой концентрации, приготовленной на 40% -ном растворе глюкозы. После введения раствора за животным ведут наблюдение. При этом отмечают начало потери чувствительности (при покалывании иглой в различных участках тола животного), расслабление мускулатуры (животное ложится), определяют показатели пульса и дыхания, продолжительность наркоза и т. д.

 

Подчеркивается, что животному  можно вводить внутривенно и  хлоралгидрат в 8...10%-ном растворе в  дозе 10 г на 100 кг массы, или 96°-ний этиловый спирт в дозе 0,35...0,45 мл/кг массы, а инъецировать в 33%-ном растворе.

     Быку для наркоза

 

Rp.: Chlorali hydrati 40 ml

Sol. Natrii chloridi steril. 0,85 % ad 400,0

M. D. S. Внутривенное

 

4. Фиксация животных  при операциях.

Для животных каждого вида применяют методы фиксации, разнообразие которых зависит от состояния  больного и характера оперативного вмешательства. Обычно животное фиксируют  в стоячем или лежачем положении.

При фиксации крупного рогатого скота в целях проведения оперативного вмешательства в стоячем положении необходимо укрепить голову. Для этого носовую перегородку сдавливают пальцами или носовыми щипцами и захватывают один рог. У быков пожизненно вставляют носовые кольца, за которые фиксируют рукой или специальными водилами.

 

Грудную или тазовую конечности приподниманием или применяют закрутки на предплечье или голень веревочной петлей, или деревянным бруском; иногда конечность сгибают в запястье и  связывают ее веревкой в области  пясти.

Наилучшая фиксация достигается в станках, При некоторых операциях относительно спокойных животных можно укреплять возле стены или забора оградив шестом  тазовые конечности.

При проведении руменоцентеза во время летней практики использовали фиксацию животного в стоячем положении, зафиксировав голову животному.

Если необходим повал  крупного рогатого скота, то наиболее приемлимым является способ Гесса.

 

Берут длинную мягкую и  прочную веревку и натирают ее мылом или тальком для лучшего скольжения и меньшего травмирования кожи. Веревку закрепляют на рогах, затем ею охватывают туловище животного дважды, делая петли в области груди и на уровне голодной ямки. В зависимости от стороны, на которую валят животное, веревку скрещивают на туловище слева или справа. При этом вымя или половой член не должны быть ущемлены. Два помощника натягивают веревку и хвост в ту сторону, куда хотят повалить животное,  а стоящий у головы помощник запрокидывает последнюю, помогая придать животному желаемое положение. Веревку ослабляют только после того, как конечности б прочно укреплены. При боковом положении их связывают вместе и растягивают. Для свободного доступа к области мошонки ответствующую тазовую конечность подтягивают к груди веревкой, пропущенной под шеей и завязанной на путе. Прочность этого крепления должна быть безупречной, так к случае разрыва веревки или ее ослабления животное может нанести ногой смертельный удар. Для укрепления в спинном положении натянутые вверх конечности попарно привязывают к прочному и длинному шесту, который удерживают либо помощники, либо его крепят к потолку помещения.

 

5. Инъекции.

Инъекция (лат. injectio — вбрасывание, син. впрыскивание) — введение жидких форм лекарственных веществ или биологических препаратов толщу тканей, полости организма, сосудистое русло. Введение больших количеств жидкости (различных растворов, крови, кровезаменителей и др.) преимущественно самотеком называют вливанием (лат. infusio).

Инъекции и вливания осуществляют в тех случаях, если введение лекарства  внутрь невозможно, нецелесообразно  или если нужно получить быстрый  лечебный эффект.

Делают их с помощью  шприца (через иглу) безыгольного инъектора или специальных систем Шприцы выпускают вместимостью 1, 2, 5, 10, 20 мл. Шприцы типа Люэра (на 2» 5, 10, 20, 50, 100 мл) состоят целиком из стекла. Для них требуются иглы с большим диаметром внутреннего конуса канюли. При необходимости использования игл к шприцам типа «Рекорд» в сочетании с шприцами типа Люэра или наоборот применяют переходные канюли. Выпускают также одноразовые стерильные пластмассовые шприцы. Для вливаний, переливания крови и промывания полостей организма используют шприцы типа Жанэ, аппарат Боброва, стеклянные воронки и др. (рис. 71).

Иглы инъекционные различной  длины и диаметра к шприцам  типа «Рекорд» и Люэра выпускают под номерами: первые две цифры обозначают диаметр трубки в десятых долях миллиметра, я последующие — длину трубки в миллиметрах. Для прочистки канала иглы снабжены тонкой проволочкой — мандреном.

Инъекции и вливания должны проводить при строгом соблюдении всех правил профилактики хирургической инфекции — стерилизации инструментов, вводимых жидкостей, подготовки рук и операционного поля. Инъекции бывают диагностическими, лечебными и профилактическими. В зависимости от путей введения жидкости различают внутрикожные, подкожные, внутримышечные, внутривенные, внутриартериальные, внутрибрюшинные, внутрисиновиальные, внутрисердечные и другие инъекции.

Внутрикожные  инъекции выполняют преимущественно для введения аллергических препаратов при диагностическом исследовании животных на инфекционные болезни. Применяют шприцы (вместимость 2 мл) с бегунком и специальные иглы или безыгольные инъекторы. Иглу вводят в толщу кожной складки, захваченной двумя пальцами, параллельно поверхности кожи. Место инъекции: у крупных животных — боковая поверхность средней трети шеи; у мелкого рогатого скота — подхвостовая складка; у свиней — наружная или внутренняя поверхность уха; у кур — бородка.

Подкожные инъекции — наиболее частый путь введения водных растворов (реже масляных). Противопоказаны суспензии, гипертонические и раздражающие растворы, которые вызывают развитие инфильтратов и некрозов. Иглу вводят под оттянутую кожную складку в местах с хорошо развитой подкожной клетчаткой: лошади и крупному рогатому скоту — в области боковой поверхности шеи, подгрудка; овцам — на внутренней поверхности бедра; свиньям — в области шеи у основания уха, внутренней поверхности бедра; собакам и кошкам — в области шеи. груди, внутренней поверхности бедра; птице — в области затылка и груди. Действие лекарства наступает через 10—15 мин.