Исследование антиоксидантной и антирадикальной активности меланиновых пигментов

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 20 Августа 2012 в 17:43, дипломная работа

Краткое описание

Целью данной работы являлось изучение антиоксидантных и антирадикальных свойств меланина, полученного из чаги.
В соответствии с целью были поставлены следующие задачи:
1) Изучить влияние меланина на интенсивность ПОЛ, индуцированного различными системами: системой Фентона, ионами Cu2+ и Fe 2+; Fe/аскорбатной системой, УФ-излучением.
2) Исследовать влияние меланина на процесс аутоокисления кверцетина, сопровождающийся генерацией супероксиданион радикала;

Содержание

Список условных сокращений…………………………………………………….4
Введение……………………………………………………………………….........5
Глава 1. Обзор литературы ………………………………………………………8
1.1. Меланин………………………………………………………………………….8
1.2. Протекторная активность меланина……………………………………….…11
Глава 2. Материалы и методы……………………………………………………..17
2.1. Реактивы………………………………………………………………….…….17
2.2. Методы исследований………………………………………………………....17
2.2.1. Спектральные исследования………………………………………………..17
2.2.2. Выделение митохондриальной фракции печени крыс………………… 18
2.2.3. Определение содержания ТБК-активных продуктов в митохондриальной фракции печени крыс………………………………………………………….….. 19
2.2.4. Определение содержания белка по методу Петерсона…………………20
2.2.5. Перекисное окисление лецитина ………………………………………..…21
2.2.6. Перекисное окисление лецитина, индуцированное УФ-излучением………………………………………………………………………….22
2.2.7. Измерение активности СОД в реакции аутоокисления кверцетина…………………………………………………………………………. 23
2.2.8. Реакция пероксидазного окисления аминобифенилов …………………...24
2.2.9. Статистическая обработка результатов……………………………….…26
Глава 3. Результаты и их обсуждение……………………………………….…..27
3.1. Изучение спектральных свойств меланина…………………………………27
3.2. Изучение влияния меланина на перекисное окисление липидов ………….…………………………………………………………………………....34
3.2.1.Изучение влияния меланина на перекисное окисление лецитина, индуцированное различными факторами………………………………………..34
3.2.2.Изучение влияния меланина на перекисное окисление лецитина под действием ультрафиолетового излучения………………………………………..37
3.2.3.Изучение влияния меланина на ПОЛ в митохондриальной фракции печени крыс………………………………………………………………………………….39
3.3.Исследование влияния меланина на процесс аутоокисления кверцетина…………………………………………………………………………..41
3.4.Изучение влияния меланина на пероксидазное окисление аминобифенилов………………………………………………………………...….42
Выводы…………………………………………………………………………..….49
Список использованной литературы……………………………………………...50

Вложенные файлы: 1 файл

дипломная работа Власовой Ю.А..docx

— 503.58 Кб (Скачать файл)

Для изучения влияния меланина на интенсивность ПОЛ, индуцированного  этими двумя системами, к каждой пробе добавляли определенный объем 1%-ого меланина, а также проводили  преинкубацию меланина с Fe2+ (100мМ FeSO4) и Cu2+  (100мМ CuSO4) в течение 15 минут.

Для определения  спонтанного уровня перекисного окисления лецитина лецитин (5 мг/мл) в фосфатном буфере.

Все пробы  инкубировали на водяной бане в течение 30 минут при  37 0С.

Затем добавляли по 2 мл 0,8% ТБК во все пробы, после чего кипятили пробирки на водяной бане 15 минут. Охлаждали до комнатной температуры. Центрифугировали 10 минут при 4000 g. Измеряли оптическую плотность надосадочной жидкости с помощью спектрофотометра “Solar PV 1251 c”, λ=532 нм.

 

2.2.6. Перекисное окисление лецитина, индуцированное УФ-излучением

0,5 мл 1% лецитина, растворенного в хлороформе и  этаноле в соотношении 1:1, добавляли к растворам 1%-ого меланина различной концентрации, доводили фосфатным буфером и облучали на УФ-лампе (λ=254 нм) в течение 5 и 15 минут. Для определения уровня спонтанного ПОЛ к раствору лецитина добавляли только фосфатный буфер (по 0,5 мл раствора лецитина и фосфатного буфера) и помещали растворы под ультрафиолет на 5 и 15 минут.

Все пробы  инкубировали в течение 30 минут при 37 0С на водяной бане.

Добавляли по 2 мл 0,8% ТБК во все пробы, после чего кипятили пробирки на водяной  бане 15 минут. Охлаждали до комнатной  температуры. Центрифугировали 10 минут  при 4000 g. Измеряли оптическую плотность полученных растворов с помощью спектрофотометра “Solar PV 1251 c”, λ=532 нм. В качестве контроля использовали фосфатный буфер.

 

2.2.7. Измерение активности СОД в реакции аутоокисления кверцетина

Реактивы:

  1. Кверцетин в ДМСО – 1,5 мг/мл – 0,46 мМ
  2. Фосфатный буфер (0,02 М, рН 7,8):

Na2HPO4*12H2O (0,2 M) – 18,3 мл;

NaH2PO4*2H2O (0,2 M) – 1,7 мл;

  1. ЭДТА – 0,08 мМ в фосфатном буфере;
  2. ТЕМЕD.

После смешивания двух солей для приготовления  фосфатного буфера объем доводили до 200 мл дистиллированной водой, потом  разбавляли  в 5 раз и добавляли  ЭДТА. Непосредственно перед работой  добавляли 0,2 мл TEMED.

Ход работы:

В опытную  пробирку вносили 0,1 мл кверцетина и 1% р-р меланина в различных концентрациях и доводили объем реакционной смеси фосфатным буфером до 3,2 мл.

Измерение проводили на спектрофотометре “Solar PV 1251 c” при λ=406 нм на нулевой и двадцатой минуте протекания реакции, соответственно до и после окисления.

В качестве положительного контроля использовали смесь буфера и меланина, а в качестве отрицательного контроля – кверцетин в буфере и 0,01 н NaOH. Процент ингибирования рассчитывали по формуле:

%=((Dк-Dпр)/Dк)*100% 

Dк (Dпр) = D20 – D0

Dк – оптическая плотность контроля;

Dпр – оптическая плотность опытной пробы;

D0 и D20 – оптическая плотность, измеренная на 0 и 20 минуте соответственно. [16]

 

      1. Реакция пероксидазного окисления аминобифенилов [11]

Реактивы:

  1. 0,1 М цитратно-ацетатный буфер, рН 5,5
  2. Пероксид водорода 0,01М
  3. 3,3’ – диметоксибензидин (о-ДА), 0,01 М (раствор о-ДА готовится в 50% ДМФА)
  4. Пероксидаза хрена. (Концентрированный препарат пероксидазы 10-4 –10-5 моль/л хранится в морозильнике в 50% глицерине. Перед работой готовится рабочий раствор 10-8 – 10-9 моль/л. Концентрация фермента рассчитывается  с использованием значения коэффициента молярной экстинкции при 403 нм – ε= 102 мМ-1 см-1. Каждый день готовится новый рабочий раствор. Препарат фермента хранится на льду).

 

Ход работы:

В пробирки вносили по 2,2 мл 0,1 М  цитратно-ацетатного буфера (pH=5,5) и по 200 мкл о-ДА(0,01 М).

Добавляли 10 мкл пероксидазы хрена (концентрация 10-9 моль/л), перемешивали.

Инкубировали при 30 oC 4 минуты. 

Измеряли оптическую плотность  при 460 нм. Запускали реакцию добавлением 100 мкл 0,01 М перекиси водорода. Одновременно начинали отсчет времени.

За ходом реакции следили  по накоплению окрашенных продуктов  реакции. Измеряли  оптическую плотность  через каждые 15 секунд в течение 3-5 минут.

Строили график зависимости концентрации продукта перекисного окисления  о-ДА от времени.

Концентрацию рассчитывали по формуле:

С=А/ε *l, где ε = 3*104 см-1М-1, а l=1см 

Находили начальную скорость реакции  пероксидазного окисления: V=ΔC/Δt

Изучали зависимость скорости пероксидазного окисления о-ДА от различных концентраций Fe2+; Fe2+, проинкубированного с 1%-ным меланином в течение 15 минут.

Изучали зависимость скорости пероксидазного окисления о-ДА от различных концентраций Cu2+; Cu2+, проинкубированного с 1%-ным меланином в течение 15 минут.

Строили графики зависимости концентрации продукта от времени при различных  концентрациях Fe2+ и Cu2+ в среде. Определяли начальные скорости реакций. [11]

 

 

 

      1. Статистическая обработка результатов

Статистическую  обработку проводили с использованием методов вариационной статистики для  малых выборок. Результаты представлены в виде ± S, где – среднее, S - средняя ошибка, а также проведен анализ достоверности отличий с использованием уровня значимости р, исходя из правила, что различия достоверны при р0,05.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Глава 3. Результаты и их обсуждение

Нами было изучено влияние меланина на интенсивность ПОЛ, индуцированного системой Фентона, ионами Cu2+ и Fe2+; на перекисное окисление липидов в митохондриальной фракции печени крыс, индуцированное Fe/аскорбатной системой; на интенсивность УФ-индуцированного ПОЛ; влияние различных концентраций меланина на процесс аутоокисления кверцетина, сопровождающийся генерацией супероксиданион радикала; на интенсивность свободнорадикальных окислительных процессов (пероксидазного окисления ортодианизидина); изучить влияние меланина (нативного и в комплексе с ионами железа и меди) на процесс пероксидазного окисления о-ДА.

Первоначально мы изучили спектральные свойства меланинового пигмента в присутствии различных химических факторов, способных окислять и восстанавливать полимеры.

 

      1. Изучение спектральных свойств меланина

Меланин поглощает как ультрафиолет, так  и видимый свет. Поглощательная способность  убывает линейно в диапазоне  от 620 до 720 нм, а затем экспоненциально  при более коротких длинах волн (300 – 600 нм).

Фотоокисление и полимеризация меланина были хорошо проиллюстрированы при описании воздействия ультрафиолета на кожный пигмент. Возможно, что одна форма  меланина с низким молекулярным весом (или полимерный предшественник меланина) превращается в другую форму с  более высокой молекулярной массой. [25]

Из литературы известно, что под воздействием ультрафиолета  оптическая плотность меланина экспоненциально  убывает от 350 до 600 нм.  Такое изменение спектральных характеристик зависит как от дозы ультрафиолета, так и от концентрации меланина.[18,25]

Интенсивность светопоглощения зависит от степени окисленности полимера. Чем больше в нем сопряженных двойных связей, альдегидных групп, тем он темнее – тем больше оптическая плотность растворов и интенсивность светопоглощения, и тем меньше светопропускание.

Как и другие ароматические соединения, содержащие  ауксохромные группы,  меланин демонстрирует различные спектры поглощения, зависящие от pH (Crippa, Horak, Protta, Svoronos, & Wolfram, 1989). [34] Влияние pH отчетливо видно на деполимеризованной форме меланина. В то время как, УФ-спектр исходного образца остается неизменным при варьировании  pH. Эта зависимость от pH среды может являться результатом диссоциации фенольных групп в меланине. А это, в свою очередь, ведет к повышению антиоксидантной активности в деполимеризованном меланине.[34]

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

На основании  данных, полученных нами при измерении оптической плотности растворов 0,01 %-ого меланина, а также растворов меланина в присутствии окислителей и восстановителей были построены следующие спектры поглощения меланина (рис.4 – 8):


 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Рис.4. Спектры поглощения 0,01% раствора меланина в 0,01 Н NaOH , растворов меланина после облучения УФ в течение 5 и 15 минут, СФ-46, λ=340-620 нм, l =1см   

Примечание I - здесь и далее: результаты достоверны при Р ≤ 0,05.

        меланин


        меланин, облученный в течение 5 мин


        меланин облученный в течение 15 мин


 

Как видно  из спектров, представленных на рис.4, облучение УФ в течение 5 минут не приводит к существенному изменению спектральных характеристик меланина, а облучение в течение 15 минут способствует уменьшению оптической плотности при λ=450 нм на 0,1 опт. ед. Это может быть связано с нарушением структуры полимера, с изменением системы сопряжения двойных связей.

 

 

 

 

Рис.5. Спектры поглощения 0,01% раствора меланина в 0,01 Н NaOH, раствора меланина с дитионитом натрия, СФ-46, λ=340-620 нм, l =1см

       меланин


      меланин с дитионитом натрия


Как видно  из спектров, представленных на рис.5, в результате взаимодействия с дитионитом натрия происходит увеличение оптической плотности в диапазоне 370 – 600 нм. Это может быть связано с тем, что дитионит натрия (Na2S2O4) восстанавливает хиноны до гидрохинонов в структуре меланина.

 


Рис.6. Спектры поглощения 0,01% раствора меланина в 0,01 Н NaOH с дитионитом натрия, с дитионитом натрия после облучения УФ в течение 5 минут, СФ-46, λ=340-620 нм, l =1см

      меланин


      меланин с дитионитом натрия


      меланин с дитионитом натрия, облученный УФ в течение 5 мин


      

Как видно  из спектров, представленных на рис.6, в результате взаимодействия с дитионитом натрия происходит увеличение оптической плотности в диапазоне 370 – 600 нм. А в результате облучения такого раствора УФ изменения оптической плотности в том же диапазоне, по сравнению с необлученной пробой, содержащей дитионит натрия, практически не происходит. По-видимому, воздействие генерализованного УФ-облучения в течение 5 минут на восстановленную форму меланина не приводит к структурным, и, следовательно, спектральным изменениям.


Рис.7. Спектры поглощения 0,01% раствора меланина в 0,01 Н NaOH, раствора меланина с пероксидом водорода, СФ-46, λ=340-620 нм, l =1см

        меланин


      меланин с пероксидом водорода


Как видно  из спектров, представленных на рис.7, в результате взаимодействия меланина с пероксидом водорода происходит уменьшение оптической плотности в диапазоне 340 – 480 нм. Это может быть связано с с увеличением системы сопряжения двойных связей в меланиновом полимере.

 

Рис.8. Спектры поглощения 0,01% раствора меланина в 0,01 Н NaOH с пероксидом водорода, раствора меланина с пероксидом водорода после облучения УФ в течение 5 минут, СФ-46, λ=340-620 нм, l =1см

      меланин


      меланин с пероксидом водорода


      меланин с пероксидом водорода с УФ 5 мин


Как видно  из спектров, представленных на рис.8, наибольшее снижение значений оптической плотности происходит в случае взаимодействия облученного меланина с перекисью водорода. Это может быть связано с окислительной способностью перекиси водорода и воздействием УФ-излучения.

 

 

 

3.2. Изучение влияния меланина на перекисное окисление липидов

Меланины  – это полианионы с относительно высоким содержанием отрицательно заряженных карбоксильных групп и о-семихинонов (Felix et al.,1978; Ito, 1986; €'rota,1992). Вещества с катионными свойствами (например, амины и металлы), таким образом, связываются с меланином путем ионного взаимодействия (Larsson and Tjalve, 1979).[20]

Ионное  связывание  несомненно упрочняется другими силами, такими, как Ван-дер Ваальсово взаимодействие при плотном соединении ароматических колец различных веществ со структурами меланина. Вовлечение взаимодействия, связанного с переносом заряда, было также показано для определенных электрон-донорных веществ, а также в некоторых случаях и гидрофобное взаимодействие. Обычно связывание многостороннее. Анализ показал, что у отдельных веществ, включающих металлы, в связывании с меланином участвует более, нежели одна группа, что указывает на присутствие взаимодействующих механизмов связывания, а также на влияние стерических факторов.[20,36]

Известно, что ПОЛ может инициироваться гидроксильными радикалами, возникающими в результате воздействия на клетку различных факторов, будь то УФ-излучение или же ионы некоторых металлов переменной валентности.

 

3.2.1. Изучение влияния меланина на перекисное окисление лецитина, индуцированное различными факторами

При проведении реакции перекисного окисления  лецитина с использованием различных  систем индукции: системы Фентона и системы с ионами двухвалентного железа – были получены следующие результаты (рис. 9, рис. 10):

Информация о работе Исследование антиоксидантной и антирадикальной активности меланиновых пигментов