Автор работы: Пользователь скрыл имя, 27 Февраля 2014 в 09:19, контрольная работа
В начале о вирусах говорили как о паразитах, не способных размножатся на искусственных питательных средах. Затем в дополнение к этим представлениям вирусы стали определять как строгих внутриклеточных паразитов. В настоящее время паразитизм их определяют как паразитизм на генетическом уровне, поскольку взаимодействие вируса и клетки – это прежде всего взаимодействие двух геномов: вирусного и клеточного, исходом которого является либо поражение генома клетки и развитие острой вирусной инфекции или интеграция вирусного генома с геном клетки и развитие процессов лизогении или трансформации клетки.
Семейство: ортомиксовирусы. Вирус - РНК-содержащий, сферической формы, размером до 120 нм, имеет суперкапсид, репродукция в ядре и цитоплазме; разливают три типа возбудителя - А, В, С. Вирус гриппа А вызывает болезнь человека, свиней, лошадей, птиц; вирусы гриппа В и С поражают только человека. Вирус обладает гемагглютинирующими свойствами и нейраминидазной активностью.
Вирус малоустойчив к факторам физического и химического воздействия. Гриппом болеют свиньи, лошади, птица (куры, утки, индейки, гуси, фазаны и др.), а также человек.
Грипп распространен на всех континентах, передается от больных здоровым аэрогенно и алиментарно.
Болезнь у животных всех видов характеризуется лихорадкой и поражением органов дыхания, заканчивается обычно выздоровлением, если не произошло бактериальное осложнение, но у кур смертность достигает 80 %. Грипп кур типа А-1 ранее называли классической чумой птиц.
Предварительный диагноз на грипп у всех поражаемых видов животных ставят на основании анализа эпизоотологических данных и клинических симптомов (патологоанатомические изменения нехарактерны).Для окончательного диагноза необходимы результаты лабораторного исследования.
Материал для исследования: выделения слизистой оболочки носа, смывы от больных животных или бронхиальный экссудат, кусочки легких от павших животных; труп целиком (птица).Экспресс-метод. Постановка РГА и РИФ. Антиген обнаруживается в цитоплазме эпителиальных клеток.
Вирусологические методы:
а) выделение вируса осуществляется путем заражения КЭ в аллантоисную и амниотическую полости: белых мышей (интраназально); КК почек поросенка и др.
б) идентификация вируса: постановка РИФ, РГА и РТГА, а также РСК с использованием выделенного антигена (вируса) и известных специфических сывороток.
Ретроспективный метод заключается в обнаружении специфической способности антител сыворотки крови больных и переболевших птиц подавлять гемагглютинирующее действие вируса РТГА.
Выявление титров 1:4 и выше у отдельных птиц дает основание для проведения вирусологических исследований с целью выделения и идентификации вируса.
Выделенный и типизированный со специфическими сыворотками вирус служит основанием для постановки диагноза.
У переболевших животных иммунитет относительно непродолжительный. Для специфической профилактики гриппа у лошадей, кур, уток применяют живые и инактивированные вакцины. Например, эмбрион-вакцина против гриппа птиц типа А.
Специфическая профилактика гриппа свиней не разработана.
5(97) Реакция задержки (торможения) гемагглютинации.
Реакция гемагглютинации не серологическая, так как в основе её участвуют два компонента: вирус и эритроциты. Основу феномена гемагглютинации, вызываемого вирусами, составляет адсорбция их на поверхности эритроцитов, сопровождающаяся склеиванием последних. Если вирус обработать специфическими антителами, то он утрачивает эту способность. На этом принципе основана специфическая реакция торможения или задержки гемагглютинации (РГТА, РЗГА), которая широко применяется для идентификации вирусов, обнаружения и титрования антител в сыворотках при использовании известного вируса. РГТА – высоко специфическая реакция, проста в постановке и быстро дает ответ, но используют её только гемагглютинирующими вирусами. Эта реакция широко используется для диагностики гриппа млекопитающих и птиц, болезни Ньюкасла, адено- и парвовирусной инфекции и др.
Для постановки реакции торможения гемагглютинации необходимы следующие компоненты: вируссодержащий материал, специфические и исследуемые сыворотки, изотонический раствор NaCI или фосфатный буфер, эритроциты соответствующего вида животного.
Для этой реакции чаще используют 0,5-1%-ную суспезию эритроцитов того вида животного, с которым используемый вирус дает наиболее стабильные результаты. Для РГТА с миксовирусами обычно используют эритроциты петухов, морской свинки, человека группы 0, с аденовирусами – белых крыс, обезьян макака-резус, а с арбовирусами – домашних гусей, барана и др.
Многие сыворотки человека и животных содержат неспецифические ингибиторы, которые могут имитировать положительный результат реакции. Все сыворотки перед реакцией обрабатывают соответствующим методом для удаления ингибиторов. Выбор места зависит от вида донора, сыворотки и свойств вируса, используемого в реакции.
Постановка РГТА включает основные этапы работы: определение гемагглютинирующего титра(1 ГАЕ) вируса, определение правильности рабочей дозы его (4ГАЕ) и проведение основного опыта.