Автор работы: Пользователь скрыл имя, 11 Марта 2015 в 20:25, курсовая работа
Цель работы: с помощью различных источников ознакомиться с проблемой обеспечения и оценки апирогенности при производстве парентеральных лекарственных форм в заводских условиях, выявить наиболее эффективные методы депирогенизации.
Задачи работы:
1) Ознакомиться со свойствами пирогенов и их ролью в патогенезе лихорадки;
2) Рассмотреть различные методы депирогенизации, сравнить их, выявить наиболее эффективные для применения в заводской технологии лекарственных форм;
1. ВВЕДЕНИЕ..........................................................................................................3
2. СВЕДЕНИЯ О ПИРОГЕНАХ.............................................................................4
3. МЕТОДЫ ОБЕСПЕЧЕНИЯ АПИРОГЕННОСТИ................................................................................................7
3.1 ПОЛУЧЕНИЕ АПИРОГЕННОЙ ВОДЫ ДЛЯ ИНЪЕКЦИЙ............7
3.2 МЕТОДЫ ДЕПИРОГЕНИЗАЦИИ....................................................10
3.2.1 ХИМИЧЕСКИЕ........................................................................10
3.2.2 ФИЗИЧЕСКИЕ.........................................................................11
4. МЕТОДЫ ОБНАРУЖЕНИЯ ПИРОГЕНОВ...................................................25
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.....................................................................................................30
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ....................
Материал, из которого сделана мембрана для ультрафильтрации воды, влияет на ее поведение в различных средах.
А) Производные целлюлозы: мембраны из этих материалов чувствительны к воздействию щелочей и кислот.
Б) Ацетаты: ацетатные мембраны для ультрафильтрации чувствительны к воздействию активных веществ и органических растворителей. Наибольшую устойчивость такие мембраны демонстрируют в кислотной среде с pH=4,5-5. Увеличение рН влияет на срок эксплуатации мембраны в установке ультрафильтрации. При pH=6 он сокращается вполовину, а при pH=10 ограничивается несколькими днями.
В) Коммерческие ультрафильтрационные мембраны охватывают диапазон от полностью гидрофильных до полностью гидрофобных, причем полиэфирсульфон (PES) занимает промежуточное положение. Характеристики полиэфирсульфона (PES) делают этот материал идеальным для смешивания с другими полимерами, при этом требуемым образом могут изменяться свойства мембраны. При смешивании с гидрофильными полимерами гидрофильность полиэфирсульфона (PES) повышается, достигая качеств мембран из ацетата целлюлозы. При этом получаемый материал лишен таких недостатков, как высокое биозагрязнение и малый диапазон допустимых значений величины рН, что приводит к сложности очистки мембран. Полиэсфирсульфон (PES) стоек к высоким концентрациям хлора. Также данный материал стоек к изменениям величины рН в диапазоне от 1 до 13, в результате чего может эффективно проводится очистка мембран как от неорганических, так и органических веществ. Загрязнение, вызванное растворенной органикой, может быть эффективно удалено при обратной промывке с величиной рН, равной 12 или больше.
Оборудование для ультрафильтрации
Ядро установки ультрафильтрации составляет мембранный модуль, где находится одна мембрана или несколько. Существует четыре основных типа мембранных модулей для ультрафильтрации воды и других жидкостей. Они отличаются друг от друга рабочим давлением, экономичностью, особенностями распределения исходного потока.
1. Модули типа фильтр-пресс, состоящие из плоских рам.
2. Трубчатые модули для ультрафильтрации нельзя назвать экономичными: эксплуатационные затраты довольно велики; тем не менее, они демонстрируют высокое качество ультрафильтрации.
3. Рулонные мембранные модули в установках для ультрафильтрации состоят из плоских рам и плит, свернутых в форме спирали.
4. Капиллярные модули, представленные в виде полых волокон.
Фильтрование на половолоконных ультрафильтрационных мембранах может осуществляться в двух режимах: 1. тупиковый режим 2. режим тангенциального фильтрования. В тупиковом режиме фильтрования вся вода, подающаяся на мембрану, фильтруется через нее. Все загрязнения, содержащиеся в исходной воде, накапливаются на поверхности мембраны и удаляются при проведении промывки обратным током. Тупиковый режим применяется в большинстве случаев, относящихся к водоподготовке, т.к. содержание взвесей в основной массе источников водоснабжения значительно ниже, чем в таких традиционных областях применения тангенциального режима фильтрования, как концентрирование крахмала и белков.
Иногда в процессах ультра/микрофильтрации используется режим тангенциального фильтрования для предотвращения чрезмерного роста отложений на поверхности мембраны. Высокие скорости тангенциального потока создают турбулентности в канале подачи воды, обеспечивая высокую эффективность очистки поверхности от накопленных загрязнений, что особенно эффективно для воды с высоким содержанием нерастворимых взвесей. Основной же недостаток такой системы – необходимость использования дополнительного мощного насоса для обеспечения требуемой скорости потока и трубопроводов обвязки, что приводит к увеличению капитальных и энергозатрат.[1;12]
Системы фильтрации в тангенциальном потоке ЗАО «Владисарт»
Системы на базе держателей мембранных кассетных модулей предназначены для проведения процессов микро- и ультрафильтрации в тангенциальном потоке («кросс-флоу»). Системы применяются везде, где требуется высокая производительность и экономичность, качество и бережная обработка продукта, например:
• Концентрирование в производстве альбумина и иммуноглобулина.
• Очистка в вакцинно-сывороточном производстве.
• Доведение водных растворов фармацевтических и биологических продуктов до требуемой концентрации.
• Осветляющая фильтрация фармацевтических растворов.
• Получение условно стерильных инфузионных растворов.
• Депирогенизация воды и растворов.
• Концентрирование и очистка в биотехнологических производствах пищевой и фармацевтической отраслей.
Установки на базе держателя АСФ - 020, АСФ - 022 (рис.5)
Установки предназначены для концентрирования, очистки, разделения спиртовых, водных, белковых растворов, биологических жидкостей, получения воды и растворов для инъекций в условиях производств, больниц, клиник и госпиталях. Установки прошли технические и токсикологические испытания во Всероссийском НИИ медицинской техники, клинические испытания в НИИ Фармации при Минздраве РФ и рекомендованы Комиссией по медицинской технике МЗ РФ для промышленного производства.
Установка представляет собой систему фильтрации со сменными фильтрующими элементами в форме кассет (кассетными модулями) на основе фильтродержателя АСФ-020, площадь фильтрующей поверхности модуля составляет 0,7 м2. В фильтродержатель АСФ-020 можно поместить до 10 модулей.
Количество устанавливаемых модулей зависит от требуемой производительности.
Фильтрующие модули изготавливаются по технологии, на оборудовании и из комплектующих материалов фирмы Sartorius (Германия).[4]
Рис.5 Установка ультрафильтрации в тангенциальном потоке на базе держателя АСФ-020 (ЗАО «Владисарт»)[4]
Установки Sartoflow ®
Системы перекрестной фильтрации SARTOFLOW® — это устройства для микрофильтрации, диафильтрации и ультрафильтрации в ходе последовательной переработки. Они применяются при стерилизации вакцин, моноклональных антител и рекомбинантных белков. Система перекрестной фильтрации SARTOFLOW® подходит для использования в
среде c GMP для разработки технологического процесса, клинических испытаний, а также для производства небольших масштабов.
Высокопроизводительные модульные установки типа Sartoflow предназначены для обработки больших объемов жидких сред( до 5000л) в биотехнологических производствах, в производствах алкогольных напитков, в фармацевтике.
Полуавтоматические / с ручным управлением системы Sartoflow® Beta (рис.6) представляют последние достижения фирмы Sartorius в области технологий кросс-флоу. Sartoflow® Beta – компактные и подвижные системы, предназначенные для микро- и ультрафильтрации в биофармацевтическом производстве. В систему устанавливается до 10 кассетных модулей Sartocon (мах.площадь мембранной поверхности 7 м2).
Применение:
• концентрация и диафильтрация протеинов, вакцин, вирусов, антител, олигонуклеотидов;
• удаление эндотоксинов;
• сбор клеток;
• осветление.[4]
Рис. 6 Установка Sartoflow® Beta (ЗАО «Владисарт»)[4]
Система тангенциальной фильтрации Sartocon 2 Plus (рис.7)
Sartocon 2 Plus – система тангенциальной фильтрации для объемов от 30 до 1000 л.
Sartocon 2 Plus подходит для всех типов фармацевтических и биотехнологических производств: концентрация и диафильтрация белков, вакцин, вирусов, антител, олигонуклеотидов, для удаления эндотоксинов и др. Система также идеально подходит для обработки культуральной массы после процессов ферментации.[4]
Рис. 7 Установка Sartocon 2 Plus (ЗАО «Владисарт») [4]
Из относительно новых методов депирогенизации можно упомянуть фильтрацию с использованием фильтрующих материалов, имеющих положительный дзета(ζ)-потенциал. Модификацией базовых микрофильтрационных мембран капроновых (ММК), получены мембраны, обладающие положительным ζ-потенциалом (от 4 до 40 мВ) – ММК+. Положительный заряд позволяет удерживать отрицательно заряженные микрочастицы, размеры которых существенно ниже абсолютного размера пор мембраны. Исследованиями, проведенными в ГОС НИИ ЭЧиГОС им. А. Н. Сысина, установлено, что модифицированные мембраны ММК+ способны при фильтрации зараженной воды задерживать до 100% колифагов и вирусов, например, вирус полиомиелита. Положительный заряд позволяет удерживать не только вирусы, но и различные бактерии, токсины, микоплазму и пирогены. Данные мембраны рекомендованы для обеззараживания воды, концентрирования и контроля содержания вирусов в водных объектах, депирогенизации водных растворов.
Полиамидные мембраны выпускаются в виде дисков и пластин различных размеров и могут использоваться в дисковых держателях и фильтр-прессах как в аналитических целях, так и для мелкомасштабной промышленной фильтрации (до 400 л).
Задачи крупномасштабной фильтрации решаются с помощью патронных фильтров. Для этих целей наиболее технологичной конструкцией являются гофрированные мембранные элементы патронного типа.
Фильтроэлементы имеют общепринятую в мировой практике конструкцию в виде цилиндра, состоящего из фильтрующего пакета, содержащего гофрированную мембрану в один или два слоя, расположенную между двумя слоями нетканого полипропиленового или лавсанового полотна. Фильтрпакет, скрепленный по краям термосваркой, помещен между двумя перфорированными опорными корпусами из полипропилена, и герметизирован по торцам расплавом полипропилена.
Эффективная поверхность мембраны в таком элементе высотой 250 мм (10 дюймов) составляет до 0,7 м2, что обеспечивает высокую исходную производительность при низком гидравлическом сопротивлении. Фильтроэлементы высотой 500, 750 и 1000 мм получают методом термосварки элементов высотой 250 мм. Фильтроэлементы выпускаются в зависимости от типа фильтродержателя с различными адаптерами (проходной, с диаметром 45 и 56 мм), снабжены уплотнительными кольцами из силиконовой резины, и могут эксплуатироваться как в отечественных, так и в импортных фильтродержателях.
Поскольку фильтроэлементы должны не только надежно удалять микрочастицы, но и сами не выделять инородные частицы в фильтрат, они проходят отмывку от органических и механических загрязнений высокоочищенной водой. В соответствии с требованиями высококачественной производственной практики (GMP) все фильтроэлементы в процессе производства подвергаются 100% контролю на точку пузырька и диффузию (контроль на целостность) с использованием самых современных приборов. Фильтроэлементы выдерживают неоднократную стерилизацию химическими реагентами, автоклавированием и острым паром в линии и имеют сертификат соответствия требованиям безопасности для полимерных изделий, применяемых в медицине.
При решении вопроса депирогенизации жидкостей с помощью мембран или глубинных фильтров с положительным ζ-потенциалом следует иметь ввиду, что, так как механизм удаления эндотоксинов в данном случае электростатический, характеристики целевого продукта и эндотоксина и условия проведения процесса связывания (в том числе влияющие на заряд сорбента и эндотоксина) являются значимыми (pН, ионная сила раствора, состав буфера, температура, скорость фильтрования, тип целевого продукта, происхождение, концентрация, молекулярная масса эндотоксинов).[5]
Также полезно помнить, что для достижения требуемого уровня эндотоксина в препарате можно использовать и сочетание методов, каждый из которых может снизить его содержание на некоторое количество порядков, например, последовательно фильтрацию и ультрафильтрацию.
Методы обнаружения пирогенов
Для практических целей, наряду с методами удаления пирогенных компонентов, большое значение имеют методы их обнаружения: химические, физические и биологические.
Химические методы основаны на проведении определенных цветных реакций (с калия перманганатом в кислой среде при нагревании до кипения, с железа хлоридом и калия феррицианатом). Эти методы не подходят для растворов легкоокисляющихся веществ, которые тоже могут вступать в реакцию, а также не обеспечивают достаточной чувствительности.
Физические методы основаны на измерении электропроводности и полярографических максимумов. Но их применение связано с использованием специального оборудования и сложностью интерпретации результатов, соблюдением множества дополнительных условий измерения.
Биологические методы. Из-за ряда недостатков первых двух методов чаще всего применяют методы биопроб, которые введены в Фармакопеи различных стран мира. До настоящего времени основным и официально принятым во всех странах методом испытания лекарственных средств на наличие пирогенных примесей является метод, основанный на троекратном измерении температуры тела кролика после внутривенного введения исследуемого препарата.[6]
Специальные статьи Фармакопей оговаривают условия проведения этого испытания, поскольку факторы – химический (корм), физический (изменение температуры окружающей среды), физиологический (возбуждение животных при анальном измерении температуры) – могут повлиять на результат испытания. И даже при самом строгом соблюдении требований к проведению испытаний невозможно избежать случайных ошибок, связанных с индивидуальной чувствительностью животных к пирогену и препарату, различными климатическими условиями, временем постановки опыта и т.п. Все это может отразиться на показателях температуры, измеряемой с точностью до ±0,1°С.
Согласно данным различных Фармакопей, доза одного и того же препарата в ряде случаев колеблется в широких пределах. Очень часто при равных или весьма близких дозах препаратов объемы вводимых растворов различаются в 5 раз. Отмечено, что наблюдается большой разрыв между дозами для кроликов и человека. Нередко эти дозы различаются в 100-6000 раз. По мнению ученых, изучавших этот вопрос, тест-доза препарата при испытании пирогенности должна подбираться индивидуально, с учетом его фармакокинетики, переносимости кроликом, и ориентировочно должна составлять 1/10 максимальной суточной дозы для человека.[6]
Информация о работе Пути обеспечения и методы оценки апирогенности парентеральных лекарственных форм