Автор работы: Пользователь скрыл имя, 27 Ноября 2015 в 12:15, дипломная работа
Республика Беларусь имеет исключительно благоприятные природно-климатические условия для развития паразитов животных и человека. Несмотря на многочисленные исследования на территории нашего государства, паразитологическая ситуация в хозяйствах остается напряженной.
Сложность разрешения проблемы борьбы с паразитами состоит в видовом многообразии последних, высокой устойчивости возбудителей во внешней среде, а также в трансформации их циклов развития в изменяющейся экологической обстановке.
ВВЕДЕНИЕ
………………………….
4
ГЛАВА 1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
………………………….
5
1.1.
Актуальность темы работы
………………………….
5
1.2.
Связь работы с научными программами, темами
………………………….
5
1.3.
Цель и задачи исследования
………………………….
5
1.4.
Методология и методы проведенного исследования
………………………….
5
1.5.
Научная новизна, практическая и экономическая значимость полученных результатов
………………………….
6
ГЛАВА 2. ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ
………………………….
2.1.
Обзор литературы
………………………….
7
2.2.
Состояние животноводства и анализ ветеринарного обслуживания хозяйства
………………………….
24
2.3.
Безопасность жизнедеятельности в хозяйстве
………………………….
30
2.4.
Экологическое обоснование работы
………………………….
33
2.5.
Материал и методы исследований
………………………….
36
2.6.
Результаты исследований
………………………….
40
2.7.
Анализ полученных результатов
………………………….
47
ГЛАВА 3. ВЫВОДЫ
………………………….
49
ГЛАВА 4. ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ
………………………….
50
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ ЛИТЕРАТУРЫ
…
Все лекарственные вещества и биопрепараты хранятся в ветаптеке. Выдача, хранение и использование этих веществ контролируются ветеринарными специалистами. В хозяйстве все более высокое применение находят новые методы лечения животных с использованием экологически чистых и биологически неопасных препаратов, лекарственных и кормовых растений (пижма, полынь горькая, зверобой продырявленный и т.д.). Территория животноводческих помещений и вокруг них поддерживается в чистоте. Каждую пятницу во всех помещениях проводят санитарный день. Вокруг ферм располагается зеленая зона, которая очищает воздух от пыли, способствует уменьшению шума и задерживает микроорганизмы, передающиеся по воздуху.
Исходя из вышесказанного и учитывая опыт, полученный за время прохождение практики, мною были выявлены в хозяйстве следующие недостатки:
- навоз не обеззараживается, а сразу вывозится на поля и пастбища, что может привести к заражению животных на пастбище и через зеленые корма инфекционными и инвазионными заболеваниями;
- трупы павших животных не всегда утилизируются в яме Беккари, а выбрасываются в овраги за фермами или скармливаются собакам:
- территории ферм не огорожены, что способствует проникновению на них диких животных и посторонних лиц;
- при использовании некоторых антибиотиков, антигельминтиков и пр., животное иногда не выдерживается указанный в инструкции срок ожидания, а сдается на мясокомбинат;
- трактора, раздающие корм, иногда простаивают на ферме с включенным двигателем.
Поэтому для улучшения природоохранительных мероприятий в хозяйстве, я предлагаю следующее:
- весь навоз перед вывозом на поля обеззараживать биотермическим методом в специальных навозохранилищах;
- недопускать случаев холостой работы тракторов и другой техники на территории животноводческих помещений;
- проводить беседы, просветительские работы на тему: «Значимость охраны природы».
Работа проводилась в хозяйстве, диагностическом отделе Гомельской и на кафедре паразитологии и инвазионных болезней животных Витебской государственной академии ветеринарной медицины в 2005-2006 годах.
Эпизоотология кишечных гельминтозов в хозяйстве определялась путем исследования проб фекалий от 10% поголовья крупного рогатого скота по методу Дарлинга в августе- сентябре 2005 года и январе-феврале 2006 года. Гельминтокопроскопическому обследованию подвергались животные разных возрастных групп: телята возрастом 4-6, 6-12 месяцев, молодняк на откорме в возрасте 12-18 месяцев и взрослые животные. Фекалии для гельминтокопроскопического исследования брали индивидуально от каждого животного, из прямой кишки, в количестве 30-50 г и помещали в пакетики из пергаментной бумаги, руки после каждого взятия пробы обмывали теплой водой с мылом. Пакетики пронумеровывали и доставляли в лабораторию кафедры паразитологии, где исследовали по методу Дарлинга на предмет наличия яиц стронгилят. Подсчет количества яиц стронгилят проводился в 20 полях зрения микроскопа.
Метод Дарлинга: пробу свежих фекалий массой 5 г смешивают в стакане с водой в соотношении 1:10 и через ситечко или марлю процеживают в другой чистый стакан. Фильтрат отстаивают 5 мин, верхний слой жидкости сливают, не взмучивая осадка, а осадок с небольшим количеством оставшейся жидкости (10 мл) переносят в центрифужную пробирку и центрифугируют 2 мин при скорости 1500 об \ мин. Надосадочную жидкость сливают, а к осадку приливают жидкость Дарлинга (глицерин, смешанный в равных частях с насыщенным раствором хлорида натрия). Пробирку встряхивают или размешивают палочкой, чтобы осадок смешался с флотационной жидкостью, повторно центрифугируют в течение 2 мин при скорости 1500 об \ мин. При наличии в пробе фекалий яиц гельминтов они всплывают на поверхность жидкости в центрифужной пробирке. Гельминтологической петлей берут 3-4 капли с поверхности взвеси, наносят на предметное стекло и микроскопируют.
Для определения родовой принадлежности стронгилят нами в сентябре 2005 года и в марте 2006 года культивировались их личинки. Для этого пробы фекалий около 50 г каждая смешивали в чашках Петри с опилками лиственных пород деревьев и перемешивая 3-4 раза в день и, по необходимости увлажняя оставляли их в термостате при температуре 24-260 С. Затем после 10-13 дней культивирования исследовали фекалии по методу Бермана-Орлова, а у выделенных личинок, пользуясь определительной таблицей П.А.Полякова (1953), по количеству и форме кишечных клеток определяли родовую принадлежность.
Метод Бермана-Орлова: пробу свежих фекалий (10 г ) помещают завернутыми в марлю или на металлическую сетку в воронку аппарата Бермана-Орлова. В этом аппарате на конец резиновой трубки зажим не устанавливают, а плотно присоединяют пробирку. При помещении в воронку с теплой водой фекалий личинки гельминтов оседают на дно пробирки. По истечении необходимого срока (для крупного рогатого скота 10-12 часов) пробирку отсоединяют от резиновой трубки, жидкость аккуратно сливают или отсасывают пипеткой, а осадок помещают на предметное стекло или чашку Петри и микроскопируют.
Для проведения дальнейших исследований нами в хозяйстве по принципу аналогов были сформированы 5 групп по 10 животных в каждой. Критерий отбора животных в эти группы заключался в обнаружении яиц стронгилят в их фекалиях.
Первой группе животных применяли препарат фармацин (аверсект-2). Это лекарственная форма аверсектина С. Препарат представляет собой прозрачный, желтого цвета стерильный раствор, содержащий 1% действующего вещества на водно-спиртово-полимерной основе. Фармацин - это лекарственная форма аверсектина С (композиция природного авермектинового комплекса), полученного на основе продуктов жизнедеятельности почвенного гриба Streptomyces avermitilis. Он обладает выраженным антипаразитарным действием, воздействует на нематод, личинок подкожных, носоглоточных, желудочных оводов, вшей, кровососок и возбудителей саркоптоидозов млекопитающих. Препарат усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, что приводит к параличу и гибели паразита. Фармацин малотоксичен для теплокровных животных. При использовании его в дозах, указанных во временном наставлении, не оказывает сенсибилизирующего, эмбриотоксического, тератогенного и мутагенного действия. Согласно наставлению по применению, фармацин применяют для профилактики арахноэнтомозов и нематодозов жвачных, лошадей, свиней, пушных зверей. Препарат вводился животным подкожно в дозе 1 мл на 50 кг массы животного однократно в область предплечья.
Животным второй группы был использован препарат «Сантомектин» (Santomectinum). Препарат представляет собой прозрачный, стерильный раствор желтого цвета. В 1 см3 препарата содержится 5 мг ивермектина и 125 мг клозантела. Сантомектин обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод желудочно-кишечного тракта и легких, трематод, личинок оводов, возбудителей саркоптоидозов животных. Механизм действия клозантела заключается в изменении процессов фосфорилирования и переноса электронов, что приводит к нарушению энергетического обмена и к гибели паразита. Ивермектин усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, которая служит для передачи сигналов от нервной клетки к клетке мышечной ткани, тем самым блокирует прохождение нервных импульсов, что вызывает паралич и гибель паразита. Сантомектин относится к умерено токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился внутримышечно в дозе 1 мл на 50 кг массы животного однократно в подлопаточную область.
Животным третьей группы был использован препарат «Сантел 5%» (Santel). Препарат представляет собой прозрачный, стерильный раствор желтого цвета. В 1 см3 препарата содержится 50 мг клозантела. Клозантел входящий в состав препарата, относится к производным салициланида. Сантел 5% обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод, трематод и личинок оводов. Действует на личиночную и половозрелую стадию Fasciola hepatica и половозрелую стадию Fasciola gigantica, личиночные и половозрелые стадии Bunostomum sp., Haemonchus contortus, Haemonchus placei, Oesophagostomum radiatum, Chabertia ovis, а также личинок оводов. Механизм действия препарата заключается в изменении процессов фосфорилирования и переноса электронов, что приводит к нарушению энергетического обмена и к гибели паразита. Сантел 5% относится к умерено токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился внутримышечно в дозе 0,5 мл на 10 кг массы животного однократно в подлопаточную область.
Животным четвертой группы был введен препарат «Ивертин» (Ivertin). Препарат представляет собой прозрачный, бесцветный или бледно-желтого цвета стерильный раствор. В 100,0 см3 препарата содержится 1,0 г ивермектина. Ивертин обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод, личинок оводов, а также эктопаразитов. Ивермектин относится к группе макроциклических лактонов. Ивермектин усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, которая служит для передачи сигналов от нервной клетки к клетке мышечной ткани, тем самым блокирует прохождение нервных импульсов, что вызывает паралич и гибель паразита. Ивертин относится к малотоксичным токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился подкожно в дозе 1 см3 раствора на 50 кг массы животного однократно в область шеи.
Пятой группе животных препарат не вводился, она являлась контрольной.
Для сравнения эффективности указанных выше препаратов проводили гельминтокопроскопическое исследование опытных и контрольных животных перед введением препарата и на 7, 10 и 15 день после введения.
У больных животных за три дня до введения препаратов были взяты пробы крови. Исследования проводили до дегельминтизации и через 15 дней после нее.
Содержание форменных элементов крови (эритроцитов и лейкоцитов) проводили с использованием камеры Горяева. Лейкограмму выводили методом дифференциального подсчета 200 лейкоцитов в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимза ("Практикум по диагностике внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных", 1985).
Определение концентрации гемоглобина в цельной крови проводилось по унифицированному гемиглобинцианидному методу. В основе метода лежит окисление гемоглобина ацетонциангидридом. Окрашенный гемоглобин определяется колориметрически при длине волны 540 нм. Концентрацию гемоглобина выражали в г\л.
В течение всего опыта животные всех групп находились в одинаковых условиях содержания и кормления. За ними вели клинические наблюдения. Полученные результаты заносили в дневник.
Весь полученный цифровой материал обрабатывали статистически с использованием персональной ЭВМ и пакета прикладных программ статистического анализа для MS Office 2003.
Работа по изучению сравнительной эффективности некоторых антигельминтиков при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота в условиях РСУП племзавода «Березки» Гомельского района Гомельской области проводилась в августе-сентябре 2005 года и январе-феврале 2006 года путем выборочного гельминтокопроскопического обследования 10% животных каждой возрастной группы. Результаты исследований приведены в таблице 2.6.1.
Таблица 2.6.1.
Зараженность паразитами желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота
Возрастные группы |
Число животных |
Стронгилятоз % |
Стронгилодоз % |
Эймериоз, % |
Летний период | ||||
Коровы |
30 |
28 |
6 |
12 |
4-6 месяцев |
30 |
11 |
8 |
16 |
6-12 месяцев |
30 |
59 |
16 |
23 |
12-18 месяцев |
30 |
52 |
9 |
20 |
Зимний период | ||||
Коровы |
30 |
13 |
3 |
3,5 |
4-6 месяцев |
30 |
6 |
5,5 |
12 |
6-12 месяцев |
30 |
46 |
12 |
15 |
12-18 месяцев |
30 |
42 |
9 |
11 |
Исходя из данных таблицы 2.6.1, можно сделать вывод, что молодняк крупного рогатого скота в возрасте 6-12 месяцев в большей степени заражен стронгилятами желудочно-кишечного тракта (59 %) и в меньшей степени эймериями (23%) и стронгилоидесами (16%).
Как видно из графика №1 экстенсивность инвазии в конце лета, начало осени значительно выше, чем в зимний период.
График №1 Динамика стронгилятозной инвазии по сезонам года
Различие экстенсивности инвазии по сезонам, с нашей точки зрения вызвано тем, что в январе-феврале инвазия находится еще в латентной форме, личинки находятся в слизистой оболочке сычуга и кишечника, а в августе и сентябре основная масса личинок достигла половозрелой стадии и находится в просвете пищеварительного тракта.
Большую же зараженность стронгилятами молодняка в возрасте до года можно объяснить их большей восприимчивостью и меньшей резистентностью к этим гельминтам, чем у взрослых животных. (График №2).