Сравнительная эффективность некоторых антигельминтиков при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота РСУП плем

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 27 Ноября 2015 в 12:15, дипломная работа

Краткое описание

Республика Беларусь имеет исключительно благоприятные природно-климатические условия для развития паразитов животных и человека. Несмотря на многочисленные исследования на территории нашего государства, паразитологическая ситуация в хозяйствах остается напряженной.
Сложность разрешения проблемы борьбы с паразитами состоит в видовом многообразии последних, высокой устойчивости возбудителей во внешней среде, а также в трансформации их циклов развития в изменяющейся экологической обстановке.

Содержание

ВВЕДЕНИЕ
………………………….
4

ГЛАВА 1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
………………………….
5

1.1.
Актуальность темы работы
………………………….
5

1.2.
Связь работы с научными программами, темами
………………………….
5

1.3.
Цель и задачи исследования
………………………….
5

1.4.
Методология и методы проведенного исследования
………………………….
5

1.5.
Научная новизна, практическая и экономическая значимость полученных результатов
………………………….
6

ГЛАВА 2. ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ
………………………….


2.1.
Обзор литературы
………………………….
7

2.2.
Состояние животноводства и анализ ветеринарного обслуживания хозяйства
………………………….
24

2.3.
Безопасность жизнедеятельности в хозяйстве
………………………….
30

2.4.
Экологическое обоснование работы
………………………….
33

2.5.
Материал и методы исследований
………………………….
36

2.6.
Результаты исследований
………………………….
40

2.7.
Анализ полученных результатов
………………………….
47

ГЛАВА 3. ВЫВОДЫ
………………………….
49

ГЛАВА 4. ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ
………………………….
50

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ ЛИТЕРАТУРЫ

Вложенные файлы: 1 файл

Сравнительная эффективность некоторых антигельминтиков при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота РСУП плем

— 1.44 Мб (Скачать файл)

Все лекарственные вещества и биопрепараты хранятся в ветаптеке. Выдача, хранение и использование этих веществ контролируются ветеринарными специалистами. В хозяйстве все более высокое применение находят новые методы лечения животных с использованием экологически чистых и биологически неопасных препаратов, лекарственных и кормовых растений (пижма, полынь горькая, зверобой продырявленный и т.д.). Территория животноводческих помещений и вокруг них поддерживается в чистоте. Каждую пятницу во всех помещениях проводят санитарный день. Вокруг ферм располагается зеленая зона, которая очищает воздух от пыли, способствует уменьшению шума и задерживает микроорганизмы, передающиеся по воздуху.

Исходя из вышесказанного и учитывая опыт, полученный за время прохождение практики, мною были выявлены в хозяйстве следующие недостатки:

- навоз не обеззараживается, а сразу вывозится на поля и пастбища, что может привести к заражению животных на пастбище и через зеленые корма инфекционными и инвазионными заболеваниями;

- трупы павших животных не всегда утилизируются в яме Беккари, а выбрасываются в овраги за фермами или скармливаются собакам:

- территории ферм не огорожены, что способствует проникновению на них диких животных и посторонних лиц;

- при использовании некоторых антибиотиков, антигельминтиков и пр., животное иногда не выдерживается указанный в инструкции срок ожидания, а сдается на мясокомбинат;

- трактора, раздающие корм, иногда простаивают на ферме с включенным двигателем.

Поэтому для улучшения природоохранительных мероприятий в хозяйстве, я предлагаю следующее:

- весь навоз перед вывозом на поля обеззараживать биотермическим методом в специальных навозохранилищах;

  • трупы павших животных утилизировать строго в яме Беккари;
  • территории ферм обнести сплошным забором высотой 2 м для предотвращения попадания на нее посторонних лиц и диких животных;
  • по возможности использовать для лечения животных экологически чистые, безвредные методы и препараты. Внедрять в практику широкое использование естественных лекарственных и кормовых растений;

- недопускать случаев холостой работы тракторов и другой техники на территории животноводческих помещений;

- проводить беседы, просветительские работы на тему: «Значимость охраны природы».

 

  • Материал и методы исследований

 

Работа проводилась в хозяйстве, диагностическом отделе Гомельской и на кафедре паразитологии и инвазионных болезней животных Витебской государственной академии ветеринарной медицины в 2005-2006 годах.

Эпизоотология кишечных гельминтозов в хозяйстве определялась путем исследования проб фекалий от 10% поголовья крупного рогатого скота по методу Дарлинга в августе- сентябре 2005 года и январе-феврале 2006 года. Гельминтокопроскопическому обследованию подвергались животные разных возрастных групп: телята возрастом 4-6, 6-12 месяцев, молодняк на откорме в возрасте 12-18 месяцев и взрослые животные. Фекалии для гельминтокопроскопического исследования брали индивидуально от каждого животного, из прямой кишки, в количестве 30-50 г и помещали в пакетики из пергаментной бумаги, руки после каждого взятия пробы обмывали теплой водой с мылом. Пакетики пронумеровывали и доставляли в лабораторию кафедры паразитологии, где исследовали по методу Дарлинга на предмет наличия яиц стронгилят. Подсчет количества яиц стронгилят проводился в 20 полях зрения микроскопа.

Метод Дарлинга: пробу свежих фекалий массой 5 г смешивают в стакане с водой в соотношении 1:10 и через ситечко или марлю процеживают в другой чистый стакан. Фильтрат отстаивают 5 мин, верхний слой жидкости сливают, не взмучивая осадка, а осадок с небольшим количеством оставшейся жидкости (10 мл) переносят в центрифужную пробирку и центрифугируют 2 мин при скорости 1500 об \ мин. Надосадочную жидкость сливают, а к осадку приливают жидкость Дарлинга (глицерин, смешанный в равных частях с насыщенным раствором хлорида натрия). Пробирку встряхивают или размешивают палочкой, чтобы осадок смешался с флотационной жидкостью, повторно центрифугируют в течение 2 мин при скорости 1500 об \ мин. При наличии в пробе фекалий яиц гельминтов они всплывают на поверхность жидкости в центрифужной пробирке. Гельминтологической петлей берут 3-4 капли с поверхности взвеси, наносят на предметное стекло и микроскопируют.

Для определения родовой принадлежности стронгилят нами в сентябре 2005 года и в марте 2006 года культивировались их личинки. Для этого пробы фекалий около 50 г каждая смешивали в чашках Петри с опилками лиственных пород деревьев и перемешивая 3-4 раза в день и, по необходимости увлажняя оставляли их в термостате при температуре 24-260 С. Затем после 10-13 дней культивирования исследовали фекалии по методу Бермана-Орлова, а у выделенных личинок, пользуясь определительной таблицей П.А.Полякова (1953), по количеству и форме кишечных клеток определяли родовую принадлежность.

Метод Бермана-Орлова: пробу свежих фекалий (10 г ) помещают завернутыми в марлю или на металлическую сетку в воронку аппарата Бермана-Орлова. В этом аппарате на конец резиновой трубки зажим не устанавливают, а плотно присоединяют пробирку. При помещении в воронку с теплой водой фекалий личинки гельминтов оседают на дно пробирки. По истечении необходимого срока (для крупного рогатого скота 10-12 часов) пробирку отсоединяют от резиновой трубки, жидкость аккуратно сливают или отсасывают пипеткой, а осадок помещают на предметное стекло или чашку Петри и микроскопируют.

Для проведения дальнейших исследований нами в хозяйстве по принципу аналогов были сформированы 5 групп по 10 животных в каждой. Критерий отбора животных в эти группы заключался в обнаружении яиц стронгилят в их фекалиях.

Первой группе животных применяли препарат фармацин (аверсект-2). Это лекарственная форма аверсектина С. Препарат представляет собой прозрачный, желтого цвета стерильный раствор, содержащий 1% действующего вещества на водно-спиртово-полимерной основе. Фармацин - это лекарственная форма аверсектина С (композиция природного авермектинового комплекса), полученного на основе продуктов жизнедеятельности почвенного гриба Streptomyces avermitilis. Он обладает выраженным антипаразитарным действием, воздействует на нематод, личинок подкожных, носоглоточных, желудочных оводов, вшей, кровососок и возбудителей саркоптоидозов млекопитающих. Препарат усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, что приводит к параличу и гибели паразита. Фармацин малотоксичен для теплокровных животных. При использовании его в дозах, указанных во временном наставлении, не оказывает сенсибилизирующего, эмбриотоксического, тератогенного и мутагенного действия. Согласно наставлению по применению, фармацин применяют для профилактики арахноэнтомозов и нематодозов жвачных, лошадей, свиней, пушных зверей. Препарат вводился животным подкожно в дозе 1 мл на 50 кг массы животного однократно в область предплечья.

Животным второй группы был использован препарат «Сантомектин» (Santomectinum). Препарат представляет собой прозрачный, стерильный раствор желтого цвета. В 1 см3 препарата содержится 5 мг ивермектина и 125 мг клозантела. Сантомектин обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод желудочно-кишечного тракта и легких, трематод, личинок оводов, возбудителей саркоптоидозов животных. Механизм действия клозантела заключается в изменении процессов фосфорилирования и переноса электронов, что приводит к нарушению энергетического обмена и к гибели паразита. Ивермектин усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, которая служит для передачи сигналов от нервной клетки к клетке мышечной ткани, тем самым блокирует прохождение нервных импульсов, что вызывает паралич и гибель паразита. Сантомектин относится к умерено токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился внутримышечно в дозе 1 мл на 50 кг массы животного однократно в подлопаточную область.

Животным третьей группы был использован препарат «Сантел 5%» (Santel). Препарат представляет собой прозрачный, стерильный раствор желтого цвета. В 1 см3 препарата содержится 50 мг клозантела. Клозантел входящий в состав препарата, относится к производным салициланида. Сантел 5% обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод, трематод и  личинок оводов. Действует на личиночную и половозрелую стадию Fasciola hepatica и половозрелую стадию Fasciola gigantica, личиночные и половозрелые стадии Bunostomum sp., Haemonchus contortus, Haemonchus placei, Oesophagostomum radiatum, Chabertia ovis, а также личинок оводов. Механизм действия препарата заключается в изменении процессов фосфорилирования и переноса электронов, что приводит к нарушению энергетического обмена и к гибели паразита. Сантел 5% относится к умерено токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился внутримышечно в дозе 0,5 мл на 10 кг массы животного однократно в подлопаточную область.

Животным четвертой группы был введен препарат «Ивертин» (Ivertin). Препарат представляет собой прозрачный, бесцветный или бледно-желтого цвета стерильный раствор. В 100,0 см3 препарата содержится 1,0 г ивермектина. Ивертин обладает широким спектром противопаразитарного действия, активен в отношении нематод, личинок оводов, а также эктопаразитов. Ивермектин относится к группе макроциклических лактонов. Ивермектин усиливает выработку нейромедиатора торможения гамма-аминомасляной кислоты, которая служит для передачи сигналов от нервной клетки к клетке мышечной ткани, тем самым блокирует прохождение нервных импульсов, что вызывает паралич и гибель паразита. Ивертин относится к малотоксичным токсическим соединениям, в рекомендованных дозах не обладает сенсибилизирующим, эмбриотоксическим, тератогенным и мутагенным действием. Препарат вводился подкожно в дозе 1 см3 раствора на 50 кг массы животного однократно в область шеи.

Пятой группе животных препарат не вводился, она являлась контрольной.

Для сравнения эффективности указанных выше препаратов проводили гельминтокопроскопическое исследование опытных и контрольных животных перед введением препарата и на 7, 10 и 15 день после введения.

У больных животных за три дня до введения препаратов были взяты пробы крови. Исследования проводили до дегельминтизации и через 15 дней после нее.

Содержание форменных элементов крови (эритроцитов и лейкоцитов) проводили с использованием камеры Горяева. Лейкограмму выводили методом дифференциального подсчета 200 лейкоцитов в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимза ("Практикум по диагностике внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных", 1985).

Определение концентрации гемоглобина в цельной крови проводилось по унифицированному гемиглобинцианидному методу. В основе метода лежит окисление гемоглобина ацетонциангидридом. Окрашенный гемоглобин определяется колориметрически при длине волны 540 нм. Концентрацию гемоглобина выражали в г\л.

В течение всего опыта животные всех групп находились в одинаковых условиях содержания и кормления. За ними вели клинические наблюдения. Полученные результаты заносили в дневник.

Весь полученный цифровой материал обрабатывали статистически с использованием персональной ЭВМ и пакета прикладных программ статистического анализа для MS Office 2003.

 

  • Результаты исследований

Работа по изучению сравнительной эффективности некоторых антигельминтиков при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота в условиях РСУП племзавода «Березки» Гомельского района Гомельской области проводилась в августе-сентябре 2005 года и январе-феврале 2006 года путем выборочного гельминтокопроскопического обследования 10% животных каждой возрастной группы. Результаты исследований приведены в таблице 2.6.1.

Таблица 2.6.1.

Зараженность паразитами желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота

Возрастные группы

Число животных

Стронгилятоз %

Стронгилодоз %

Эймериоз, %

Летний период

Коровы

30

28

6

12

4-6 месяцев

30

11

8

16

6-12 месяцев

30

59

16

23

12-18 месяцев

30

52

9

20

Зимний период

Коровы

30

13

3

3,5

4-6 месяцев

30

6

5,5

12

6-12 месяцев

30

46

12

15

12-18 месяцев

30

42

9

11


Исходя из данных таблицы 2.6.1, можно сделать вывод, что молодняк крупного рогатого скота в возрасте 6-12 месяцев в большей степени заражен стронгилятами желудочно-кишечного тракта (59 %) и в меньшей степени эймериями (23%) и стронгилоидесами (16%).

Как видно из графика №1 экстенсивность инвазии в конце лета, начало осени значительно выше, чем в зимний период.

График №1 Динамика стронгилятозной инвазии по сезонам года

Различие экстенсивности инвазии по сезонам, с нашей точки зрения вызвано тем, что в январе-феврале инвазия находится еще в латентной форме, личинки находятся в слизистой оболочке сычуга и кишечника, а в августе и сентябре основная масса личинок достигла половозрелой стадии и находится в просвете пищеварительного тракта.

Большую же зараженность стронгилятами молодняка в возрасте до года можно объяснить их большей восприимчивостью и меньшей резистентностью к этим гельминтам, чем у взрослых животных. (График №2).

Информация о работе Сравнительная эффективность некоторых антигельминтиков при стронгилятозах желудочно-кишечного тракта крупного рогатого скота РСУП плем