Пиелонефрит

Подготовка кошек  к ультразвуковым диагностическим  исследованиям. При подготовке животных к исследованию органов брюшной полости рекомендуется выдержать их на голодной диете 6-8 часов. Перед исследованием мочевого пузыря у котов им рекомендуется провести очистительную клизму (за 2-3 часа до исследования). Некоторым кошкам перед исследованием могут потребоваться средства седации. Поскольку УЗИ — процедура безболезненная, в качестве седативных средств рекомендуется использовать ветранквил 1 % (внутривенно — 0,2-0,3 мл на 10 кг массы животного; внутримышечно — 0,25-0,5 мл на 10 кг массы). Непосредственно перед ультразвуковым исследованием необходимо удалить шерстный покров в зоне предполагаемого сканирования. Обволосненные участки, особенно у кошек длинношерстных пород, весьма редко можно исследовать без удаления шерсти, нанося предварительно вазелиновое масло. Для достижения хорошего контакта датчика и кожи рекомендуется применять достаточное количество специального геля для УЗИ.

Методика ультразвукового  сканирования почек. Почки у кошек доступны для ультразвукового сканирования со стороны вентральной (трансабдоминальное сканирование) и боковой брюшной стенки. При трансабдоминальном сканировании необходимо учитывать, что вентрально почки прикрыты петлями тонкого кишечника, газы которого не пропускают ультразвуковые лучи. Поэтому при проведении исследования почек через брюшную стенку необходимо не только перемещать датчик вдоль и поперек, но и менять его положение относительно вертикальной линии. Такое перемещение датчика во всех направлениях называется полипозиционным. При положении «на спине» у животного расстояние от кожи живота до почек при различном положении датчика может достигать 5-7 см, что позволяет использовать датчики с частотой 3,0-3,5 МГц. Трансабдоминальное полипозиционное сканирование не всегда позволяет визуализировать почки из-за вышеуказанных причин. Другим доступом к почкам для их ультразвуковой визуализации может служить боковая стенка брюшной полости. В этом случае животное укладывают на столе в боковом положении и проводят сканирование вдоль реберной дуги. Такой способ позволяет исследовать только одну из почек. В связи с тем, что глубина их залегания у кошки при положении «на боку» небольшая (4-5 см), необходимо использовать датчики частотой не менее 5 МГц для получения хорошего изображения.

В приложении 1 снимок УЗИ исследуемого животного.

3. Биохимическое исследование различных биологических субстратов

1. Исследование крови

К специальным методам  исследования крови прибегают в  тех случаях, когда необходимо и  возможно установить диагноз на уровне изучения морфологических характеристик  клеток в мазке или изменения  их функциональных свойств под воздействием различных факторов. В первом случае исследования ведут с использованием цитохимических красителей, специфически реагирующих с определенными  включениями или компонентами клеток; функциональные свойства клетки определяют как ответ на физико-химические воздействия 

1. Правила взятия крови

Условия взятия крови и  ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят  от техники взятия крови и используемых при этой инструментов. В организме  различает артериальную, венозную и  капиллярную кровь, которая имеет  незначительные цитологические и биохимические  отличия. Для морфологических исследований пользуются почти исключительно  капиллярной кровью, а при биохимических  — венозной^[4].

Капиллярную кровь берут  из внутренней поверхности ушной  раковины. Шерсть на месте взятия крови  выстригают, очищают место укола  ватным тампоном, смоченным спиртом-эфиром. Укол делают на глубину до 2 мм. Первую каплю крови стирают, т.к. она содержит случайные примеси и лимфу, а последующие берут для исследования. Очень важно, чтобы кровь вытекала из ранки без надавливания на ткани, иначе она смешивается с лимфой и изменяет свой клеточный и биохимический состав. Истечение крови можно ускорить, если предварительно прогревать место укола в теплой воде или источником сухого тепла (фен, электролампа) ^[2].

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием. Иглы для взятия крови  должны быть с коротким срезом и  достаточно большим диаметром, чтобы  не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения  эритроцитов. Предварительно иглы стерилизуют  кипячением в 1%-ом растворе бикарбоната  натрия, место укола обрабатывают аналогично получению капиллярной крови^[12].

У кошек место пункции является латеральная подкожная вена в средней части голени (вена Сафена). У кошек можно получит образец крови из яремной вены, если необходимо взять ее больше чем 5 миллилитров. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом — в 20-30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь^[9].

Кровь должна стекать по стенке сухой, чистой пробирки во избежание разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места укола, иглу извлекают, а место укола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют настойкой йода и заливают Колодием.

2. Методика получения сыворотки крови

Для получения сыворотки  пробирку с кровью ставят в термостат  при температуре 37 Сº на 30 минут для образования сгустка, после чего стальной спицей или стеклянной палочкой отделяют сгусток от стенок пробирки и жидкость центрифугируют 15-30 минут при 3000 об./мин. После отделения сыворотки и ретракции сгустка осторожно пипеткой отбирают жидкость в чистые, сухие стеклянные пробирки; сыворотку красного цвета с осадком центрифугируют 15 минут при 3000 об./мин. Если форменные элементы не осели на дно пробирки и состав не стал желтого цвета, то такая гемолизированая сыворотка не пригодна для исследования. Если сыворотка крови в верхней третьей части пробирки имеет беловатый мутный цвет, то она является липемичной. Для биохимического исследования используют прозрачную или слегка желтоватого цвета сыворотку, без признаков гемолиза^[6].

В сыворотке крови проведено  определение следующих биохимических  показателей: гликопротеины, сиаловые кислоты, общий белок, АлАТ, АсАТ, β-липопротеины, мочевина, креатинин, хондроитинсульфаты.

3. Клинико-диагностическое значение выбранных нами биохимических тестов

Общий белок — белки — главный биохимический критерий жизни. Они входят в состав всех анатомических структур (мышцы, клеточные мембраны), переносят вещества по крови и в клетки, ускоряют течение биохимических реакций в организме, распознают вещества — свои или чужие и защищают от чужих, регулируют обмен веществ, удерживают жидкость в кровеносных сосудах и не дают ей уходить в ткани. Белки синтезируются в печени из аминокислот пищи. Общий белок крови можно разделить на основные фракции: альбумины и глобулины.

Среднее для кошек содержание белка — 54-77 г/л^[11].

Причины повышения (гиперпротеинемии): обезвоживание (ожоги, диарея, рвота — относительное повышение концентрации белка за счет снижения объема жидкости), миеломная болезнь (избыточная продукция гамма-глобулинов) ^[13].

Причины снижения (гипопротеинемии): голодание (полное или белковое — строгое вегетарианство, нервная анорексия), заболевания кишечника (нарушение всасывания), нефротический синдром (почечная недостаточность), повышенное потребление (кровопотеря, ожоги, опухоли, асцит, хроническое и острое воспаление), хроническая печеночная недостаточность (гепатит, цирроз).

Гликопротеины (ГП) — это группа сложных белков, которые построены из простого белка и простетичной группы, представленной углеводом – гексозой или ее производными. Углеводной частью ГП могут быть гексозамины, галактоза, глюкоза, сиаловые кислоты и другие. Почти все белки плазмы, кроме альбуминов, представляют собой ГП. Эта широкая группа белков с разнообразными функциями. В плазме крови ГП выполняет защитную функцию благодаря содержанию в них сиаловых кислот, которые, занимающие в молекуле ГП крайнее положение, способны инактивировать разные вирусы.

Концентрация ГП чаще всего  повышается в ответ на патологический процесс при разных заболеваниях внутренних органов. При этом наблюдается однотипный характер их изменений в сторону повышения: при плеврите, пневмонии, туберкулезе легких, остром ревматизме, гломерулонефрите, а так же остром и хроническом лейкозе, миеломе, лимфосаркоме и других деструктивных процессах в соединительной ткани органов и систем. Понижение концентрации ГП бывает при диффузном, паренхиматозном поражении печени, остром вирусном гепатите.

Сиаловые кислоты — (одноосновные полиоксиаминокислоты) входят, в свою очередь, в состав некоторых гликопротеинов, а также гликолипидов клеточных мембран. Содержание сиаловых кислот заметно повышается при ряде заболеваний, сопровождающихся распадом этих макромолекул, при воспалительных процессах (ревматоидном артрите, полиартрите и др.).

Аланинаминотрансфераза (АлАТ) — фермент, вырабатываемый клетками печени, скелетных мышц и сердца.

Норма активности для кошек — 0-75 ЕД^[11].

Причины повышения: разрушение клеток печени (некроз, цирроз, желтуха, опухоли), разрушение мышечной ткани (травма, миозит, мышечная дистрофия), ожоги, токсическое действие на печень лекарств (антибиотиков и др.).

Аспартатаминотрансфераза (АсАТ) — фермент вырабатываемый клетками сердца, печени, скелетных мышц и эритроцитами.

Норма активности для кошек — 9-30 ЕД^[11].

Причины повышения: повреждение печеночных клеток (гепатит, токсическое повреждение лекарствами, метастазы в печень), тяжелая физическая нагрузка, сердечная недостаточность, ожоги, тепловой удар^[13].

β-липопротеины — повышение содержания β-липопротеинов в сыворотке крови наблюдается при алиментарной нагрузке жирами, при остром гепатите и наличию механической желтухи, а так же при ожирении, гипертиреозе, сахарном диабете, атеросклерозе, нефротическом синдроме и других.

Мочевина — конечный продукт обмена белков, удаляющийся почками. Синтезируется только в печени. Часть остается в крови.

Норма для кошки — 4-10,5 ммоль/л^[4].

Причины повышения: нарушение функции почек, непроходимость мочевыводящих путей, повышенное содержание белка в пище — повышенное разрушение белка (ожоги, острый инфаркт миокарда).

Причины снижения: белковое голодание, избыточное (не алиментарное) потребление белка организмом (беременность, акромегалия), нарушение всасывания, очень тяжелая патология печени (цирроз, опухоль, гепатодистрофия).

Креатинин — конечный продукт метаболизма аминокислоты креатина, синтезируемого в почках и печени из трех аминокислот (аргинина, глицина, метионина). Полностью выделяется из организма почками путем клубочковой фильтрации, не реабсорбируясь в почечных канальцах.

Норма для кошки - 55-180 мкмоль/л. У самцов показатель выше чем у самок^[11].

Причины повышения: нарушение функции почек (почечная недостаточность), гипертиреоз.

Причины понижения: беременность, возрастные уменьшения мышечной массы.

Хондроитинсульфаты (ХСТ) — самый важный компонент агрекана — основного протеингликана хрящевого матрикса. Кроме этого, они содержатся в костях, межпозвоночных дисках, коже, сухожилиях, связках, артериях, склере глаза, стромальных элементах печени, сердечных клапанах, тканях легких, почек. ХСТ построены из дисахаридных мономеров, в состав которых входит N-ацетилгалактозамин и глюкуроновая кислота, кроме того, к остатку N-ацетилгалактозамина в положении 4 или 6 присоединяется остаток сульфатной кислоты. Хондроитин-4-сульфат содержится в большом количестве в костях, хрящах, склере, аорте, строме печени, а хондроитин-6-сульфат в хрящах, коже, связках, сухожилиях, пупочном канатике, клапанах сердца. В почках, легких, и матке оба ХСТ тоже обнаруживаются в незначительных количествах, но их соотношения практически не изучены. Считают, что ХСТ регулируют ионное равновесие, проницаемость тканей, берут участие в процессе оссификации, связывают внеклеточную воду, регулируют процессы диффузии, модифицируют структуру коллагеновых фибрилл и выполняют другие важные функции. Уровень общих хондроитинсульфатов в сыворотке крови увеличивается при многих острых воспалительных процессах, гепатитах, циррозе печени, амилоидозе почек, рахите, остеодистрофии, остеоартрозе. Повышение концентрации ХСТ в крови при заболеваниях печени связано с потерей или снижением функции расщепления ХСТ гепатоцитами, что приводит к накоплению их в сыворотке крови.

У большинства видов животных уровень общего ХСТ колеблется в  пределах 0,03-0,15 г/л^[11]. У плотоядных уровень ХСТ ниже, чем у травоядных, концентрация повышается с возрастом. В предагональном состоянии их уровень очень высок (до 10 раз).