Факторы адаптивного иммунитета

После выхода из шокового состояния  у животных некоторое время сохраняются  нарушения функций различных  органов и систем в течение 3—4 недель (чаще всего почечная и печёночная недостаточность). В связи с возможностью развития таких осложнений животные требуют врачебного наблюдения.

С возрастом анафилактический шок протекает тяжелее, так как  компенсаторные возможности организма уменьшаются, а организм обычно приобретает хронические заболевания. Тяжелый анафилактический шок в сочетании с сердечно-сосудистым заболеванием - летальная комбинация.

Факторы риска развития лекарственного анафилактического шока:

- Лекарственная аллергия в анамнезе;

 - Использование депо-препаратов;

- Длительное применение лекарственных веществ, особенно повторными курсами;

- Высокая сенсибилизирующая активность лекарственного препарата;

- Полипрагмазия (применение большого количества препаратов);

- Аллергические заболевания в анамнезе.

Практически все лекарственные  вещества могут вызывать анафилактический шок. Наиболее часто лекарственная анафилаксия развивается при применении антибиотиков, анальгетиков, местных анестетиков, витаминов, преимущественно группы В, рентгеноконтрастных веществ. Ни доза, ни способ введения лекарства не играют решающей роли в возникновении шока у высокосенсибилизированных животных. Однако наиболее быстрое развитие шока происходит при парентеральном введении лекарственных препаратов.

Врач всегда уточняет аллергоанамнез. При аллергии на лекарственные препараты - эти препараты пожизненно не назначаются животному. Также не назначаются и лекарства, имеющие сходную антигенную структуру с указанными препаратами, для предотвращения перекрестных реакций. Им также следует ограничивать парентеральное применение.

 Также животным проводятся аллергологические пробы: капельная; аппликационная кожная; скарификационная кожная; провокационная подъязычная; пероральная ; парентеральная. Больным с поливалентной лекарственной аллергией с тяжелыми клиническими проявлениями, учитывая небезопасность кожных тестов, показано иммунологическое исследование in vitro (наиболее предпочтительна реакция торможения лейкоцитов - РТМЛ) или тест торможения естественной эмиграции лейкоцитов in vivo (TTEЭЛ). В случае невозможности проведения иммунологического исследования кожное тестирование начинается с капельной пробы. Отрицательный результат предыдущей пробы определяет возможность проведения последующей: скарификационной, сублингвальной, парентеральной.

Терапия анафилактического  шока включает комплекс неотложных мероприятий, направленных на ликвидацию главных  нарушений, вызванных аллергической реакцией:

- ликвидацию острых нарушений сосудистого тонуса;

- компенсацию возникшей надпочечниковой недостаточности;

- блокирование высвобождения, нейтрализацию и ингибицию медиаторов аллергической реакции;

- поддержание функций различных жизненно важных органов и систем.

Для лечения применяются катехоламины, глюкокортикоиды, бронхолитики, антигистаминные препараты. Проводится адекватная инфузионная терапия.

 

3.Лабораторные модельные  системы в иммунологии: чистолинейные,гнотобионты. Трансгенные животные. Трансгенные животные и растения.

 

Чистые линии — ограниченная совокупность наследственно однородных организмов, происходящих от одного общего предка. Входящие в состав чистых линий организмы называются чистолинейными. Чистые линии играют большую роль в различных областях экспериментальной медицины и биологии. Практическое значение чистых линий заключается в возможности контроля за генетической изменчивостью отдельных признаков или их совокупности.В экспериментальной практике используют чистые линии мышей, крыс, хомячков, морских свинок, кроликов, кур и других животных.

Гнотобионты – это лабораторные животные, выращенные с рождения в стерильных условиях. Обычно гнотобионты получают путем кесарева сечения и содержат в специальных боксах, в которых отсутствуют микробы. Туда подаются стерильный воздух, пища, вода. Гнотобионты не подвержены воздействию сапрофитной или патогенной микрофлоры воздуха, вследствие этого, в отличие от обычных животных, их реакции на воздействие факторов окружающей среды более выражены. Это позволяет биологам, изучая ту или иную проблему, исключить влияние собственной микрофлоры на полученные результаты.

Трансгенные растения — это те растения, которым «пересажены» гены других организмов.Это гибриды с измененным набором генов. Изменения производят для того, чтобы придать растению некоторые полезные свойства: морозостойкость, урожайность, устойчивость к вредителям, калорийность и т.д. Так, в Китае еще в 1992 году выращивали табак, который «не боялся» вредных насекомых. Начало массовому производству модифицированных продуктов положили США, когда в 1994 году - появились помидоры, которые не портились при перевозке. Затем появилась трансгенная соя и кукуруза, был разработан вид картофеля, устойчивый к колорадскому жуку.

 

 

 

 

 

 

4.Опишите структуру ветеринарной  лаборатории, ее оборудование, иммунологические методы, используемые в лаборатории. Методы лабораторной диагностики в ветеринарии.

 

В Российской Федерации имеются  федеральные, субъектовые, зональные, районные, межрайонные, городские, частные ветеринарные лаборатории, диагностические кабинеты.

Структура и штаты ветеринарной лаборатории определяются в установленном  порядке ветеринарным органом по подчиненности с учетом задач  лаборатории, объема и характера  ее работы.

Оборудование для ветеринарной лаборатории включает оптические устройства (микроскопы) и аналитическое оборудование, позволяющее исследовать свойства крови, мочи, образцов тканей, других биоматериалов на микроуровне. В современных лабораториях устанавливаются новейшие модели титраторов. Для выполнения гистологических исследований применяют специальное оборудование для изготовления и обработки образцов тканей: микротомы и криостаты, автоматы для парафиновой заливки и окрашивания препаратов, устройства гистологической проводки. В ветеринарной лаборатории должны быть  бактерицидные лампы, дезинфекционное и стерилизующее оборудование, сухожаровые шкафы и автоклавы.

Появление мобильных лабораторно-диагностических комплексов делает возможным проведение выездных исследований.

Методы лабораторной диагностики в ветеринарии довольно многочисленны.

Лабораторные анализы выполняются  практически у всех больных животных и значительно чаще, чем другие дополнительные методы обследования.

Общий клинический анализ крови проводят на гематологических анализаторах (автоматические счетчики, основанные на кондуктометрическом методе) или ручным способом (камера Горяева) с целью подсчета клеток крови (лейкоциты, эритроциты, тромбоциты), а также оценки их размеров, структуры и цитохимических характеристик клеток, концентрации гемоглобина. Помимо количественных характеристик, общий анализ крови дает оценку и качественному составу клеток при помощи исследования мазка периферической крови при тысячекратном увеличении под микроскопом. Основная задача микроскопии мазка крови – это подсчет лейкоцитарной формулы, т.е. разделение лейкоцитов на популяции (нейтрофилы, эозинофилы, базофилы, моноциты, лимфоциты), оценка их степени зрелости и состояния клеток. Помимо лейкоцитарной формулы, оценивается и состояние эритроцитов (размеры, форма, наличие ядерных форм, насыщенность гемоглобином, наличие различных включений, в т.ч. паразитарного происхождения и пр.), а также качество тромбоцитов. Проводят анализ на ретикулоциты для оценки регенераторной способности костного мозга при анемии. Процент ретикулоцитов оценивается при помощи микроскопии мазка, окрашенного специальным красителем.

Коагулометрия позволяет оценить состояние свертывающей системы крови. На специальном автоматическом коагулометре измеряют протромбиновое время (ПВ), активированное частичное тромбопластиновое время (АЧТВ), тромбиновое время (ТВ), концентрацию фибриногена.

 При биохимическом анализе крови исследуются ферменты (АСТ, АЛТ, щелочная фосфатаза, липаза, амилаза и др.), белки, небелковые азотистые компоненты (мочевина, креатинин), пигменты (билирубин), показатели углеводного (глюкоза, фруктозамин), липидного (триглицериды, холестерин) и водно-солевого обменов (натрий, калий, хлор, кальций, магний, фосфор и др.). Для выполнения биохимического анализа используются специальные автоматические биохимические анализаторы. Их принцип работы которых основан на различных методах исследования, главным образом оптических (спектрофотомерия, флюорометрия и др.) Также широко применяют электрофорез (для определения белков), различные виды хроматографии, ионо-специфическую потенциометрию (для исследования уровня электролитов), иммуноферментный анализ и др.

Определение концентрации гормонов в крови проводится с помощью иммуноферментного анализа (ИФА).

Общий анализ мочи позволяет оценить функцию почек и других внутренних органов, а также выявить воспалительный процесс в мочевых путях. Исследование мочи состоит из физико-химического анализа, с помощью которого определяют цвет, относительную плотность, прозрачность, белок, глюкозу и кетоновые тела, и микроскопического исследования (обнаруживаются эритроциты и лейкоциты, эпителиальные клетки, цилиндры, слизь, кристаллы и некоторые патологические микроорганизмы). Определение концентрации мочи (удельный вес, или относительная плотность мочи) проводится рефрактометрическим методом на специальном приборе.

Общий клинический анализ кала, или  копрограмма позволяет оценить работу желудочно-кишечного тракта, выявить наличие воспалительных процессов, яиц гельминтов или простейших. При помощи физико-химических методов определяют цвет, форму, кислотность кала, запах, консистенцию, наличие примесей (слизь, шерсть, членики гельминтов и пр.), а также наличие крови, стеркобилина, билирубина, крахмала, нейтрального жира и др. При микроскопическом исследовании определяют переваримость корма, наличие клеточных элементов (лейкоциты, эритроциты, эпителиальные клетки) и паразитов (различные формы простейших, яйца и личинки гельминтов).

Яйца гельминтов и простейших в кале также можно обнаружить при помощи овогельминтоскопии, в основе которой лежит принцип флотации и микроскопия.

Для обнаружения эктопаразитов и дерматофитов проводится исследование соскобов с кожи при помощи световой микроскопии. Для видового определения дерматофитов (микроспория, трихофития) и выявления животных-носителей (без клинического проявления заболевания) выполняется посев на специальные среды.

Бактериологический посев - это  лабораторное исследование, направленное на выявление и идентификацию  микроорганизмов, вызывающих заболевание, с определением их чувствительности к антибиотикам, для назначения правильного  лечения или определения эффективности  проведенного лечения. Бактериологический посев чаще всего проводят при подозрении на инфекционно-воспалительные процессы в тканях и органах, которые в норме не содержат бактерий, поэтому важным условием для исследования является правильный забор исследуемого биологического материала.

Иммунологические лабораторные  методы основаны на специфическом взаимодействии антигенов и антител. В  основе  этих  методов  исследований  лежит  реакция  «антиген-антитело»   с  образованием  иммунных  комплексов,  которые  можно  обнаружить  в  сыворотке  крови  (в  пробирке)  различными  методами.

 Эти методы  используются  для  выявления  возбудителей  инфекционных  и паразитарных  заболеваний,  определения гормонов,  беременности,   диагностики  аутоиммунных   болезней,   видовой принадлежности  белков,  опухолевых  антигенов,  для  определения  групп  крови  и  совместимости  переливаемой  крови.  Иммунологические  исследования  позволяют  не только  идентифицировать  различные  вирусные, бактериальные или   паразитарные заболевания,  а также  определять  титры  антител к ним. Это  позволяет   оценивать   устойчивость  организма  к  отдельным  видам  инфекционных  болезней.   С  помощью  иммунологических  методов  изучают  иммунитет, а также оценивают эффективность профилактических прививок.  

Например, при   исследовании  антител  к  инфекционным  заболеваниям,  например  к  лептоспирозу  или  токсоплазмозу,  достоверные результаты получают при исследовании «парных» сывороток. Сначала  анализируют кровь  больного,   взятую  в первые дни заболевания. Затем, изучают повторную пробу через 10 – 14 дней  и  на  основании  нарастания титра антител  ставят  окончательный  диагноз.

В  зависимости  от  механизма  и  учета результатов   иммунологические методы  исследования  подразделяют  на:   реакции,  основанные  на  явлении  агглютинации;  реакции,  основанные  на явлении преципитации; реакции нейтрализации;  реакции с участием комплемента;  реакции с использованием физических и химических методов (иммуноферментный  и  иммунофлюоресцентный  анализы, иммунохроматография ), иммуноблотинг.

Несмотря на многообразие методов  лабораторной диагностики инфекционных заболеваний, самым современным  и точным является полимеразная цепная реакция (ПЦР).