Автор работы: Пользователь скрыл имя, 03 Февраля 2014 в 21:35, курсовая работа
Цель моей курсовой работы заключается в том, чтобы показать, что одним из основных требований к качеству парентеральных лекарственных форм является апирогенность. Пирогенные вещества – это продукты жизнедеятельности и распада микроорганизмов, погибшие микробные клетки. Присутствие этих веществ в инъекционных растворах может вызвать у больного при введении в сосуды, спинномозговой канал пирогенную реакцию – повышение температуры тела, озноб и другие болезненные реакции, а высокое содержание их может привести к летальному исходу.
Введение……………………………………………………………………...3
Цели и задачи работы………………………………………………………5
Обзор литературы:
I. Пирогенные вещества………………………………………………..6
II. Источники и природа пирогенных веществ:
1. Эндогенные пирогенные вещества………………………………7
2. Экзогенные пирогенные вещества………………………………8
III. Пирогенал……………………………………………………………10
IV. Лихорадка……………………………………………………………12
V. Пирогенная реакция…………………………………………………13
VI. Предотвращение пирогенности лекарственных препаратов (способы депирогенизации)…………………………………………14
VII. Получение апирогенной дистиллированной воды для инъекций..17
VIII. Хранение воды для инъекций……………………………………….25
IX. Методы определения пирогенных веществ в лекарственных средствах:
1. Биологический метод (испытание на кроликах)………………..27
2. Лимулус-тест (LaL-тест)…………………………………………..29
3. Труднодоступные и малоиспользуемые методы определения пирогенных веществ в лекарственных средствах………………31
Заключение…………………………………………………………………...33
Список использованной литературы………………………………………34
Сборник-уравнитель (25) также предназначен
для смешивания воды с
Дозирующее устройство соединено со сборником-уравнителем (25) через капельницы (24). Крепление дозирующего устройства осуществляется на кронштейне (19), в котором имеются специальные отверстия для стеклянных сосудов (22), закрепляемых при помощи резиновых колец (20), и специальные пазы, в которые свободно вставлены дозаторы (18). Дозаторы (18) крепятся на кронштейне (19) контргайками (17). Таким образом, получение воды апирогенной обеспечивается за счет тщательной сепарации пара, а также за счет добавления в воду по необходимости химических реагентов: калия перманганата, квасцов алюмокалиевых и натрия гидрофосфата, для чего имеется специальное дозирующее устройство, состоящее из двух стеклянных сосудов с капельницами, фильтрами и дозаторами. В один сосуд помещают раствор натрия гидрофосфата и квасцов алюмокалиевых, в другой – раствор калия перманганата. Дозирующее устройство устанавливают так, чтобы на один литр воды подавалось 0,152 г калия перманганата, 0,228 г квасцов алюмокалиевых и 0,228 г натрия гидрофосфата. Однако, вода до дистилляции не освобождается от солей, придающих ей жесткость.
Аппарат А-10 работает с
В настоящее время выпускают
три типа дистилляторов (АЭВС-
Аппарат АЭВС-4А (дистиллятор
Работа аппарата
АЭВС-25 (дистиллятор электрический с водоподготовкой для получения апирогенной воды) представляет собой стационарную установку. Аппарат состоит из следующих составных частей: испарителей и 2 ступеней (2), конденсатора (1), сборника воды для инъекций (3) «рис. 3».
На линии подачи водопроводной
воды в испарителе
Пароводная смесь из
«Рис. 3» Аппарат для получения воды апирогенной АЭВС-25
Аппарат АЭВС-60 представляет собой
аквадистиллятор с
Вода деминерализованная (Aqua demineralisata) в медицинской практике применяется наряду с водой для инъекций, для изготовления инъекционных растворов. Вода деминерализованная для инъекционных растворов получается путем пропускания исходной воды через стерилизующий фильтр и свежерегенерированные иониты: пористые сильнокислотные катиониты и высокоосновные аниониты в Н- и ОН-формах, так как они после тщательной отмывки не выделяют в воду никаких примесей. В качестве катионита используют КУ-23 или его аналог КУ-2-8пч, в качестве анионита АВ-171 или АВ-17-8пс. Ионообменные смолы перед употреблением и периодически по мере истощения обменной емкости подвергают регенерации. В качестве стерилизующего фильтра используют фильтр Сальникова ( «СФ-5»). Можно использовать и другие, гарантирующие стерильность пропущенной через них воды фильтры: пористые стеклянные, фарфоровые, керамические, миллипоровые.
В процессе получения воды
осуществляют постоянное
Воду деминерализованную для
инъекционных растворов
Хранение воды для инъекций
Большое значение для качества воды имеет способ ее сбора и хранение.
Хранить воду для инъекций
необходимо в закрытых сосудах,
Для этой цели рекомендованы
сборники воды для инъекций, которые
предназначены для сбора,
Для сохранения стерильности воды апирогенной в ряде аптек осуществляют подачу ее от аквадистиллятора к рабочему месту ассистента по стерильному стеклянному трубопроводу. На пути следования по трубопроводу вода стерилизуется ультрафиолетовой радиацией. Хранение в сборниках воды для инъекций и подача ее на рабочее место ассистента осуществляется в соответствии с приказом Минздрава СССР № 581 от 30.04.85 г. Вода для инъекций применяется свежеперегнанной. Хранится в асептических условиях. Годна к употреблению не более 24 ч.
«Рис. 4» Сборник воды для инъекций
Контроль качества воды для
инъекций. На основании приказа
Минздрава СССР № 573 от 30.11.62 г.
вода для инъекций
Методы определения пирогенных веществ в лекарственных средствах
В связи значительной
Проверке на пирогенность
Биологический метод (испытание на кроликах)
Согласно ГФ XI испытание пирогенности проводят на кроликах (биологический метод). Берут кроликов обоего пола массой от 1,5 до 2,5 кг, содержащихся в строго регламентированных условиях и имеющих исходную ректальную температуру от 38,50 С до 39,50 С. Растворы испытуемых лекарственных веществ или препаратов и жидкие лекарственные препараты вводят в количествах и растворителях, указанных в соответствующих фармакопейных статьях или специальных инструкциях. Используемая для разведения вода для инъекций должна быть стерильной и апирогенной. Для испытания воды для инъекций из нее предварительно готовят 0,9%-ный раствор натрия хлорида, используя депирогенизированный и простерилизованный (нагреванием при 2500 С в течение 30 мин или при 1800 С в течение 2 ч) натрия хлорид. Количество вводимого раствора натрия хлорида составляет 10 мл на 1 кг массы.
Стерильные испытуемые
Испытание каждого раствора
Вода или раствор
Нормативными документами
Рассмотренный метод имеет ряд
существенных недостатков:
Лимулус-тест (LaL-тест)
В настоящее время наиболее
перспективным методом
Лизат амебоцитов Limulus (LaL) получают следующим образом. Отбирают иглой кровь краба, помещают ее в буферный раствор. Отделяют центрифугированием амебоциты, являющиеся единственными клетками крови краба, отмывают их гипертоническим раствором натрия хлорида, а затем лизируют, добавляя дистиллированную апирогенную воду. Полученный LaL, хранящийся при +40 С, устойчив в течение 9 месяцев.
Лимулус-тест проводят, смешивая в асептических условиях в пробирке 0,1 мл испытуемого раствора с 0,1 мл LaL. Смесь инкубируют при 370 С в течение от 15 до 90 мин при рН от 6,0 до 8,0, не подвергая ее встряхиванию. При наличии пирогенных эндотоксинов грамотрицательных бактерий образуется гель, который обнаруживается по увеличению вязкости смеси, потере ею текучести. При повороте пробирки на 1800 гель не должен разрушаться.
Лимулус-тест уже в 1980 г. включен
в ХХ фармакопею США наряду
с тестом на кроликах. Его преимуществом
является высокая
Предложена также новая