Биотестирование окружающей среды

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 26 Ноября 2015 в 19:18, курсовая работа

Краткое описание

Метод биоиндикации основан на избирательном биологическом накоплении веществ из окружающей среды организмами растений и животных. Наиболее опасными для биотических сообществ являются антропогенные загрязнения вод тяжелыми металлами, радионуклидами, некоторыми хлорорганическими производными, так как вызывают в живых организмах отклик в виде накопления этих веществ, как всем организмом, так и его отдельными частями.

Содержание

Введение………………………………………………………………………
3
1. Основные источники загрязнения водной среды………………………..
4
2. Биоиндикация окружающей среды………………………………………
11
3. Оценка качества водной среды, методами биоиндикации……………...
16
3.1 Биологический контроль водоема методами сапробности………...
18
3.2 Биологический анализ активного ила……………………………….
23
3.3 Оценка трофических свойств водоема, с использованием высших растений………………………………………………………………………
29
4. Биотестирование окружающей среды……………………………………
34
4.1 Изменение спонтанной двигательной активности инфузорий под влиянием антропогенных факторов…………………………………………
38
4.2 Биотестирование загрязнения воды с помощью ряски малой…………………………………………………………………………..
40
4.3 Оценка токсичности вод пресного водоема по фильтрационной активности дафний…………………………………………………………...
43
Заключение…………………………………………………………………...
46
Список использованной литературы………………

Вложенные файлы: 1 файл

Документ Microsoft Office Word (3).docx

— 186.20 Кб (Скачать файл)



 

 Частоту встречаемости учитывают  по девятибалльной шестиступенчатой шкале частот со следующими обозначениями: 1 — очень редко, 2 — редко, 3 — нередко, 5 — часто, 7 — очень часто, 9 — масса (таблица 8).

 

Таблица 8 – Соотношение значений относительного обилия и частоты встречаемости организмов (h)

 

Частота встречаемости

Количество экземпляров одного вида, %

h

Очень редко

<1

1

Редко

2-10

2

Нередко

10-40

3

Часто

40-60

5

Очень часто

60-80

7

Масса

80-100

9


 

В рабочий журнал вносятся названия всех индикаторных видов водных растений (таблица 9).

 

Талица 9 – Индикаторные виды макрофитов водоемов различной трофности

 

Тип водоема

Дистрофный

Олиготрофный

Мезотрофный

Эвтрофный

Вахта трехлистная (Menyanthes trifoliate)

Лобелия Дортмана (Lobelia dortmanna)

Рдест сплюснутый (Potamogeton compressus)

Повойничек (водяной перец) (Elatine hydroplper)

Белокрыльник болотный (Calla pallustris)

Уруть очередноцветковая (Myriophillum alternftorum)

Ряска трехдольная (Lemna irisulca)

Шелковник неукореняющийся (Batrachium eradicatum)

Сабельник болотный (Comarum palustre)

Лютик простертый (Ranunculus reptens)

Уруть мутовчатая (Myriophyllum verticullatum)

Шелковник шенхелевидный (B. foeniculaceum)

Ежеголовник родственный (Sparganium affine)

Полушник колючеплодный (Isoetes echinospora)

Кувшинка белая (Nymphaea alba)

 

Кубышка желтая (Nuphar lutea)

Полушник озерной (Isoetes lacustris)

Ряска малая (L. minor)

 

Сфагновые мхи (Sphagnum)

Рдест блестящий (Potamogeton lucens)

Стрелолист плавающий (Sagittaria natans)

 

 

Классификация стоячих водоемов по трофности:

1. Ацидотрофные водоемы довольно своеобразны по своей природе. По классификации Тинеманна – Науманна к ним относятся водоемы с кислой реакцией воды (рН < 5,5). Они могут иметь как бесцветную, так и окрашенную в бурый цвет воду. В первом случае имеет место комбинация ацидотрофии с олиготрофией, во втором – ацидотрофии с дистрофией. Густые заросли тростника и камыша, процветающие в щелочных водах, в более кислых уменьшаются, встречаются более ограниченно, а в очень кислых водах исчезают совсем, на их месте начинают развиваться осока, хвощ и манник.

2. Ацидотрофно-олиготрофные водоемы можно установить по наличию показателей олиготрофии – лобелии Дортмана (Lobelia dortmarma), урути очередноцветковой (Myriophyllum alterniflorum), по слабому развитию растительного покрова, значительной разреженности зарослей и угнетенному состоянию растений с низким значением фитомассы.

3. Ацидотрофно-дистрофные водоемы можно выделить по преобладанию водно-болотных растений – видов рода Саrех, вахты трехлистной (Menyanthes trifoliata), кизляка кистецветного (Naumburgia thysiflora), сабельника болотного (Comarum palustre). Зарегистрированы в них также водная сосенка (Hippuris vulgaris), пузырчатка обыкновенная (Utricularia vulgaris). Ограниченно представлены уруть очередноцветковая и лобелия Дортмана. Степень покрытия этих водоемов макрофитами невелика, заросли в значительной мере разрежены, растения угнетены, величины фитомассы низки. Кислая реакция среды и низкая прозрачность воды отрицательно влияют на произрастание растений.

4. Дистрофные водоемы расположены в основном в заболоченной местности, берега их низкие, болотистые, с редкой растительностью, часто сложены из сфагнума. Реакция среды кислая, вода сильно окрашена, прозрачность ее очень низкая. Значительно разреживаются прибрежные заросли тростника и хвоща. Исчезают рдесты и частично заменяются на заросли ежеголовника. Для дистрофных водоемов характерны вдоль уреза воды различные виды осок и водно-болотной растительности, на дне – сфагновый мох. Часто встречаются тростник обыкновенный (Phragmites australis), хвощ топяной (Equisetum fluviatile), кубышка желтая (Nuphar lutea), ежеголовник родственный (Sparganium affine).

5. Для озер олиготрофного типа характерно присутствие лобелии Дортмана, урути очередноцветковой. Степень их зарастания незначительна, растительные сообщества распространены весьма ограниченно. Фитоценозы в основном разрежены. Развитие растений удовлетворительное, величина фитомассы невелика.

6. Для водоемов мезотрофного и эвтрофного типов характерны нейтральная или щелочная среда и малая прозрачность. Показательно наличие рогоза узколистного (Typha angustifolia), стрелолиста плавающего (Sagittaria natans), элодеи канадской (Elodea Canadensis) [17].

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4 Биотестирование окружающей среды

 

Установление критериев (ПДК) выполняет профилактическую функцию, упреждая экологически опасное загрязнение. Биотестирование оценивает происходящее загрязнение и нацелено на получение быстрого сигнала о токсичности и необходимой степени разбавления стоков. Биоиндикация позволяет выявить результат вредоносного влияния загрязнения на окружающую среду, ее результаты могут быть учтены при корректировке нормативов и при выборе зоны применения биотестирования. Нормирование, биотестирование и биоиндикация не заменяют друг друга, а по мере необходимости только дополняют друг друга. Биотестирование и биоиндикация являются основными элементами биологического мониторинга состояния окружающей среды.

Общая система предотвращения и контроля неблагоприятных последствий загрязнения на окружающую среду включает в себя элементы ограничения поступления чужеродных веществ в окружающую среду в экологически значимых количествах и контроля уровня текущего загрязнения.

Предотвращение загрязнения предусматривает внедрение малоотходных технологий и повышение эффективности очистки отходов. Основным ориентиром для таких технологий оказываются нормативы качества среды, устанавливаемые на основе продолжительных экспериментальных исследований. Наряду с ПДК санитарно-гигиенического назначения, призванными предотвратить риск отравления человека, существуют лимиты, призванные защитить полезные для человека организмы – эколого-рыбохозяйственные ПДК и ОБУВ. ПДК представляет собой максимальную концентрацию загрязняющего вещества в воде водного объекта, при которой в водоеме не возникает последствий, снижающих его промысловую значимость в настоящее время и в перспективе, или затрудняющих его рыбохозяйственное использование [3].

Методология нормирования исходит из следующих принципов:

1 3ащите подлежит многокомпонентная в экологическом отношении система, где основные элементы должны быть защищены постоянно.

2 Водная экосистема при загрязнении теряет стабильность в результате последовательного выпадения самых чувствительных звеньев. Поэтому при определении допустимых уровней для каждого компонента и системы в целом необходимо ориентироваться в эксперименте на самое чувствительное звено в ассортименте контролируемых показателей эффекта

3 В процессе экспериментальных оценок токсичности испытания должны быть в обязательном порядке проведены хотя бы на одном представителе каждой из основных экологических групп водного сообщества.

4 Нормативы в качественном и количественном отношениях должны обеспечиваться химико-аналитической базой.

5 Для каждого из химических соединений может быть установлена только одна величина эколого-рыбохозяйственного норматива (за исключением случаев, предусмотренных условиями регионального нормирования).

По сути, такие нормативы являются экологическими в широком плане, т.к. должны защищать не только промысловый, но и самоочистительный ресурс водной среды. В таблице показан ассортимент организмов, включенных в систему установления ПДК. Основные тест-параметры для каждого из тест-объектов контролируются в обязательном порядке. Вспомогательные тест-параметры могут быть использованы для уточнения пределов действующих концентраций или для установления особенностей действия исследуемого вещества.

Максимально допустимая концентрация для наиболее чувствительного тест-объекта может рассматриваться в качестве ПДК для исследуемого вещества.

Хотя концепция нормирования далеко не решает всех проблем, связанных с предотвращением экологически опасного загрязнения водной среды, и некоторыми энтузиастами природоохранной политики рассматривается как легализация загрязнения, тем не менее, существование лимитов допустимого загрязнения остается на сегодняшний день единственным средством сдерживания такого загрязнения [21].

 

Таблица 10 – Объекты и показатели, используемые при установлении эколого-рыбохозяйственных нормативов

 

Тест-объект

Тест-параметр

Основной

Вспомогательный

Организмы-редуценты

Бактериальная микрофлора

Численность клеток.Дыхание (по БПК). Концентрации кислорода, аммиака, нитритов, нитратов

 

Организмы-продуценты

Водоросли

Общая численность клеток, рН среды, концентрация кислорода, соотношение живых и мертвых клеток

Биомасса. Содержание пигментов. Интенсивность фотосинтеза

Макрофиты

Выживаемость, рост стебля, отростков, корней

Интенсивность фотосинтеза

Зоопланктон

Инфузории

Выживаемость, размножение

Поведение

Ракообразные

Выживаемость, плодовитость, численность и возрастной состав модельных популяций

Морфологическиеизменения

Зообентос

Моллюски

Выживаемость, плодовитость, питание, масса

Поведение.Морфологические изменения.Потребление кислорода

Хирономиды

Выживаемость на различных стадиях и сроки их прохождения. Морфологические аномалии.Плодовитость

Поведение, вес и общее состояние личинок и имаго

Рыбы

Эмбриогенез

Выживаемость эмбрионов.Выклев и состояние предличинок

Аномалии развития.Биохимические отклонения

Взрослые

Выживаемость, масса тела, анатомические и клинические изменения, питание, частотадыхания, органолептика мяса, кумуляция

Поведение. Биохимические изменения


Основная часть претензий, предъявляемых к нормированию, должна быть переадресована к несовершенству применения нормативов в практике.

Контроль за соблюдением установленных нормативов производится химико-аналитическими методами. Однако, одновременное присутствие множества веществ даже в концентрациях, не превышающих их ПДК, может порождать биологические эффекты, которые невозможно предсказать на основе частных химических определений. Контроль за токсичностью стоков и загрязняемых вод водных объектов может быть проведен только методами битестирования. Основной принцип гидробиологического биотестирования заключается в испытании действия проб воды на водный организм, его часть или сообщество организмов с известными и поддающимися учету характеристиками.

Таким образом, тест-объект выступает в роли прибора, выявляющего интегральный биологический эффект комплекса неблагоприятных экологических факторов, в том числе и химической природы. В качестве тест-объектов рекомендован широкий круг организмов, охватывающий все группы биологического сообщества. Но ни один из тест-объектов не может служить универсальным индикатором, в равной степени чувствительным ко всем экологическим факторам, из-за видовой избирательности действия потенциальных токсикантов. С введением каждого дополнительного объекта надежность схемы испытаний повышается, однако бесконечное расширение ассортимента обязательных объектов невозможно. В связи с этим для каждого предлагаемого метода биотестрования должно быть определено строгое целевое назначение, обозначена область применения и очевидные преимущества перед рекомендованными ранее [14].

Биотестирование может применяться для решения следующих задач:

1 определение токсичности отдельных веществ, вынужденно или преднамеренно вносимых в окружающую среду, для представителей водных сообществ в целях скрининга и нормирования;

2 выявление присутствия в объектах окружающей среды потенциальных токсикантов неизвестного состава, что могло бы служить основанием для последующего химического исследования этой среды;

3 установление источников токсического загрязнения экосистем и оценка их интенсивности;

4 определение необходимой степени разведения сточных вод до биологически и экологически безвредных уровней.

Методы биотестирования отличаются высокой чувствительностью и позволяют определять токсические вещества в концентрации до 10 – 8 %. Объектом исследований может быть любой объекты внешней среды (вода, почва), отходы промышленного производства и т.д. Так, например, в связи с возрастающим антропогенным загрязнением воды на Земле возникает необходимость в экспресс-анализе ее качества. В настоящее время оценку качества воды, включающую содержание физиологически вредных примесей, принято контролировать дифференцированными химическими анализами, а пригодность – сравнением с существующими ГОСТами. Однако число известных токсикантов сейчас уже превысило 40000, а гостировано лишь около 1000.Следует учесть и стоимость химического анализа воды – более 1000 руб. при расширении спектра обязательных исследований по новому ГОСТ. Все это ограничивает возможности применения химических способов исследования и делает систему биологического тестирования все более привлекательной. Для интегральной оценки применяют различные биотесты, известно их более 100. В качестве тест-объектов используют представителей основных трофических звеньев водной экосистемы: бактерии, водоросли, простейшие, ракообразные, рыбы.

В отличие от биотестирования биоиндикация представляет собой выявление последствий загрязнения водного объекта по функциональным и морфологическим показателям его обитателей или по экологическим характеристикам сообщества. Изменения, зарегистрированные методами биоиндикации, являются результатом уже состоявшегося ранее загрязнения с заведомым превышением нормативов, или длительного загрязнения малой интенсивности. Ее результаты могут быть учтены при корректировке нормативов, при выборе зоны применения биотестирования или при определении природоохранной стратегии.

Основная проблема, с которой сталкивается биоиндикация, это идентификация фактора окружающей среды, который оказался причиной изменений биообъектов, наблюдаемых в природных условиях.

Биотестирование и биоиндикация являются основными элементами биологического мониторинга состояния окружающей среды. Возможен мониторинг как состояния биологических объектов, так и компонентов окружающей среды. Оценка проб среды с использованием тест-организмов и наблюдение за состоянием биообъектов, вносимых в контролируемую экосистему в разнообразных садках, представляет собой биотестирование.

Таким образом, нормирование выполняет профилактическую функцию, упреждая экологически опасное загрязнение. ПДК вещества должна быть установлена до начала его поступления в окружающую среду. Биотестирование выполняет функцию тактического контроля происходящего загрязнения, нацеленного на получение быстрого сигнала о токсичности и необходимой степени разбавления конкретных стоков. На водном объекте оно может быть эффективным с момента начала загрязнения до его завершения. Биоиндикация выявляет результат произошедшего вредоносного воздействия на окружающую среду. Может применяться на экологическом объекте постоянно, но эффективность его станет очевидной при начале неблагоприятных экологических изменений. Эти три элемента общей природоохранной стратегии дополняют, но не способны заменить друг друга. Задачей экологов является отработка оптимальных режимов применения каждого из подходов, целенаправленного и обоснованного применения их в системе ограничения загрязнения [22].


 

4.1 Изменение спонтанной двигательной  активности инфузорий под влиянием  антропогенных факторов

 

Водные представители простейших (Protozoa) привлекают в последнее время внимание исследователей, занимающихся поиском критериев оценки качества водной среды. Инфузория спиростома (Spirostomum ambiguum Ehrbg.) имеет достаточно большие размеры и видна невооруженным глазом. В ответ на неблагоприятные воздействия окружающей среды инфузория изменяет свою двигательную активность и ряд других физиологических показателей. К ним относятся изменения: сроков выживаемости после воздействия; двигательной активности в ответ на стрессовое воздействие; формы тела под влиянием неблагоприятных факторов; возбудимости в ответ на раздражение. Использование большего числа параметров функционального состояния инфузории позволяет адекватно характеризовать величину нарушений под влиянием антропогенных воздействий [23].

Спиростома, инфузория длиной 1 – 3 мм, имеет в норме характерную червеобразную форму. Тело покрыто ресничками, более длинными у ротового отверстия, они служат для захвата пищевых частиц. Пищеварительные вакуоли диффузно расположены в плазме. По их числу можно судить о степени насыщения животных. Инфузории свойственна сократимость. Перистомальная впадина образует левозакрученную спираль и тянется от переднего конца до 1/3 длины тела. Сократительная вакуоль помещается в конце тела. Ядерный аппарат представлен чечетковидным макронуклеусом и множеством микронуклеусов. При длительном нахождении спиростом в лаборатории четко видим, что ядро принимало округлую бобовидную форму. Такое изменение структуры ядерного аппарата (если оно не связано с делением) служит показателем физиологической реорганизации клетки, а также может, по-видимому, наступать в ответ на изменение состояния среды. Плазма ограничена от внешней среды двойной мембраной. Поверхность инфузории, на которой расположены реснички, исчерчена гребнями и бороздами. В эктодерме между ресничками перпендикулярно к поверхности тела расположены трихоцисты. Реснички имеют типичное для инфузории строение – две центральные фибриллы и девять пар периферических фибрилл. В свою очередь фибриллы характеризуются сложным слоистым строением. На границе между экто- и эндоплазмой находится тонкий сетчатый слой, который можно рассматривать как сократительную фибриллярную систему. Вместе с тем не исключена его роль как координационной или опорной системы. В эктоплазме имеются различные волокнистые образования. В периферических слоях цитоплазмы концентрируются крупные митохондрии. Наиболее активными в функциональном отношении следует считать поверхностные слои клетки, характеризуемые сложностью строения и высокой концентрацией митохондрий. Электронно-микроскопическое исследование спиростомы свидетельствует о сложной морфологической организации клетки простейшего, отражающей ее полифункциональность.

Поведение рассматривается как один из факторов, регулирующих состояние биоценоза и косвенно характеризующих его свойства. Среди различных «ответных» реакций животных на внешние воздействия поведение относится к наиболее чувствительным феноменам. Известно, что поведение донервных организмов характеризуется достаточной сложностью и в значительной степени модифицируется под влиянием различных факторов внешней среды. Примером такого поведения служит спонтанная двигательная активность (СДА), свойственная животным всех уровней филогенеза, включая простейших. Вероятно, наличие поведенческих реакций, отражающих реакции гидробионтов на изменения в биоценозе, может явиться критерием «гомеостатического» состояния последнего [12].

Спиростомы содержатся в водопроводной воде, отстоянной не менее трех суток и отфильтрованной дважды через обеззоленный фильтр. Пересадка спиростом осуществляется раз в неделю. Из маточной культуры, которая может храниться в холодильнике до 2 – 3 месяца, переливают половину содержимого в чистую пробирку и доливают водой, оставляя от верхнего края 2 – 2,5 см. Добавляют 5 мг сухих пивных дрожжей (на шпателе). Содержимое пробирки не перемешивают и пробирку закрывают неплотно ваткой.

В ответ на различные раздражители (химические, электрические, тактильные) инфузории изменяют скорость движения. Величина изменения скорости движения служит интегрированным критерием функционального состояния инфузорий, меняющегося в зависимости от глубины влияния воздействия на клетку факторов окружающей среды. Оценку изменения функционального состояния инфузорий спиростом проводят с помощью индекса двигательной активности (СДА) – количества пересечений инфузорией визира окуляра бинокулярной лупы за 1 мин.

Для просчета СДА культуру инфузорий наливают на часовое стекло, помещают под бинокулярную лупу и капилляром переносят по одной спиростоме в специальную ячейку (камеру) для просчета. Камера представляет собой пластиковую пластинку толщиной 5 мм с углублениями 1 – 2 мм диаметром 5 мм. Спиростому оставляют в камере на 5 мин для привыкания, затем считают количество пересечений визира окуляра (рисунок 2) в течение 5 мин.

 

 

Рисунок 2 – Подсчет спонтанной двигательной активности спиростомы с помощью бинокулярной лупы

 

Принцип метода заключается в изменении спонтанной двигательной активности (СДА) спиростомы в среде с токсикантом, которое оценивается по количеству пересечений животным визира окуляра бинокулярной лупы по сравнению с СДА в чистой воде (контроль). В результате подсчитывают среднее количество пересечений и отклонение от среднего в опытном и контрольном образцах [17].

Информация о работе Биотестирование окружающей среды