Ветеринарная организация

Обеспеченность кадрами  лаборатории  100% это 140 человек из них заведующие районных ветеринарных лабораторий, отделов, лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы 9,3%; ветеринарные врачи с высшим образованием 27%; лаборанты со среднеспециальным образованием 17,8%;  санитары 19,2%;  младший обслуживающий персонал 17,6%; АХО 9,1%.

Специалисты лаборатории  постоянно повышают квалификацию на курсах ФПК и семинарах за рубежом,  в разных институтах и центрах  тем самым показывая высокий  показатель профессионализма в области ветеринарии.[6]

В лаборатории ведутся  разработки по паразитологии, успешно  проводят испытания новых методов  в производственных условиях лаборатории, на которые получены авторские свидетельства  Комитета по правам интеллектуальной собственности МЮ РК.

В отделе паразитологии проводят паразитологические и ихтиопатологические исследования это лабораторно-диагностические исследования с целью обнаружения возбудителей паразитарных  болезней животных, рыб, птиц, пчел.

Для выполнения вышеизложенных работ отдел расположен в 7  кабинетах  лаборатории где размещено необходимое оборудование и приборы. В отделе 1 врач и 1 лаборант и санитар.

Пробы поступают в комнату  приема материала, где проводится ознакомление соответствия поступившей пробы  с записями в сопроводительном документе. В зависимости от поступившего материала  проводится следующий порядок исследований:

1. Фекалий - копрологические исследования методами Фюллеборна и Дарлинга

2. Кровь - микроскопические  исследования для выявления возбудителей  кровепаразитарных болезней животных  готовятся тонкие мазки крови,  окрашиваются методом Романовского-Гимза.

3. Мясо – исследуется  методом трихинеллоскопии для обнаружения личинок трихинелл, финн, эхинококков, описторхисов

4. Рыба – исследуется  методом полных гельминтологических  вскрытий разработанный  К.И.Скрябиным и модифицированный применительно к рыбам В.А. Догелем.  Так же нами разработаны и апробированы новые способы диагностики тканевых паразитов рыб как более простых, доступных, нетрудоемких по исполнению, а также новых способов консервации гельминтологического материала. Приоритет (первенство) изобретения по  способам исследования мышечных тканей на наличие паразитов, ларвальных стадий гельминтов и составы для просветления и хранения биологических объектов  в ветеринарии зарегистрирована и подтверждена инновационным патентом Национального патентного ведомства РК. 

5. Изготовление музейных  макро и микропрепаратов, представляющих  возбудителей гельминтозов и пораженные ими органы[9].

 

2. Правила работы  с материалом, направленным на  экспертизу

2.1 Правила охраны труда и техники безопасности в подразделении бактериологической диагностики

 

В подразделении  бактериологической диагностики необходимо иметь комнаты для проведения бактериологических исследований, оборудованное  место или бокс для работы с  чистыми культурами, а также место  для приготовления растворов, красок, подготовки других материалов.

Комнаты, в которых  проводят бактериологические исследования должны быть достаточно освещенными и просторными.

На рабочих  местах (по числу работающих) постоянно  должны находиться: необходимые для  повседневной бактериологической работы стекла (предметные в банке и покровные в бюксике), бактериологическая петля, банки с ватой, стерильные пастеровские пипетки, пинцет, ножницы, скальпель, банки с дезрастворами для отработанных предметных стекол и отдельно для покровных стекол, а также для пипеток, спиртовка или газовая горелка, карандаши или чернила по стеклу, пробирки с физиологическим раствором, груши резиновые, а на рабочем месте врача, кроме того, микроскоп с осветителем и масленка с иммерсионным маслом.

Для окраски мазков оборудуют специальное место, на котором необходимо  иметь набор  красок и фиксирующих жидкостей, песочные часы (на 1, 2 и 5  минут), бутыль с тубусом или промывалку с дистиллированной водой, коническую чашку (кювет или другую ёмкость) с мостиком, газовую горелку или спиртовку, пинцет и фильтровальную бумагу.

Материал, поступивший  для бактериологического исследования, должен рассматриваться как инфицированный.

Посевы и пересевы производят петлей или пастеровской пипеткой над пламенем горелки. После посева петлю и нижнюю часть петледержателя прожигают  сначала  в  нижней, затем в верхней трети пламени, а пастеровские пипетки помещают в банку с дезраствором.

При проведении посевов из исходного материала и пересевов культур пастеровскими пипетками насасывать жидкости следует с помощью резиновой  груши или шланга. Насасывание жидкости ртом запрещается.

Переливание инфицированной жидкости из сосуда в сосуд через  край не допускается. Для этой цели пользуются пипетками.

Все манипуляции  с культурами возбудителей особо  опасных болезней или материалом, подозрительным в заражении этими  возбудителями. проводят над кюветом.

Мазки из патологического  материала или культур до фиксации и окраски хранят под стеклянным колпаком.

Первичные посевы и суспензии (кусочки органов), взятые для заражения, а также первичные  мазки хранят до выдачи окончательного ответа. Термостаты, холодильники, шкафы, в которых хранят посевы (пробирки и др.), в конце рабочего дня  опечатывают (пли опечатывают комнату,  в которой они размещены).

Пипетки, предметные и покровные стекла и бывшую в  употреблении посуду сначала обеззараживают 5 %-ным раствором хлорамина  или 0,5%-ным водным раствором глютекса.

При работе с  кислотоустойчивыми микобактериями для  дезинфекции используют 5%-ный раствор  хлорамина или 0.5%-иый водный раствор  глютекса а при работе с лептоспирами -1 %-ный раствор соляной кислоты.

Заразный материал из одного помещения в другое или  в общую автоклавную для обеззараживания переносят в специальном закрывающемся металлическом контейнере.

 После окончания  исследований отработанные посевы (в пробирках, чашках и др.), кусочки органов или суспензии  органов, взятые для заражения  лабораторных животных, пастеровские  пипетки, трупы лабораторных животных   подлежат обеззараживанию:

• при выделении из патологического материала возбудителя сибирской язвы или споровых анаэробных болезней - автоклавированием при 1,5 атмосферах в течение 2 часов с последующим контрольным высевом на соответствующие питательные среды. Такой же обработке подвергают инструментарий, стекла и другие предметы, соприкасавшиеся с инфицированным материалом;
• при выделении неспоровых возбудителей или отрицательных результатах бактериологического исследования - автоклавированием при 1,5 атмосферах в течение 1 часа. При этом инструментарий, стекла и другие предметы, соприкасавшиеся с инфицированным материалом, обезвреживают кипячением в течение 30 минут в растворе соды.

О проведенной  стерилизации материала делают запись в специальном журнале. В нем  указывают дату стерилизации, сколько  и какой материал обеззаражен, режим  стерилизации, ставят подпись лица, проводившего обеззараживание, и отмечают результаты контрольных высевов.

Ответственность за правильное проведение стерилизации материала  и посуды возлагается  на ветеринарного врача (заведующего  отделом),  а при наличии в учреждении централизованной автоклавной на заведующего или дежурного  лаборанта автоклавной[10].

 

2.2 Правила охраны труда и техники безопасности в подразделении вирусных болезней

 

Работа с возбудителями  вирусных болезней допускается лишь в особо оборудованных или  в специально приспособленных лабораторных помещениях, отвечающих требованиям  полной изоляции и безопасности для  окружающих и обеспеченных всеми  средствами охраны труда работающего  в них персонала.

Исследование  материала с целью диагностики  вирусных болезней должно проводиться  только в лабораториях, обеспеченных системой изолированных комнат.

Лабораторные  комнаты, где проводят работу с вирусным материалом, должны быть хорошо освещены и состоять из двух отделений, разделенных  стеклянной перегородкой. Одно отделение (внутреннее) является боксом.

Работу с материалом, инфицированным вирусом, проводят в  боксе на столе с влагонепроницаемой поверхностью (из металла, мрамора).

Участок рабочего стола (80*50 см) покрывают несколькими  слоями марли, увлажненной 5 %-ным раствором хлорамина или 0,5%-ным водным раствором глютекса.

Трупы лабораторных животных сначала погружают в  бачки с дезраствором, а в конце рабочего дня специально выделенный сотрудник собирает их в общий бак и сжигает. Если нет возможности сжечь трупы на месте, их вместе с бачками автоклавируют.

В специальном  журнале регистрируют общее количество уничтоженных животных. Мусор из клеток после предварительного увлажнения раствором лизола собирают в баки с крышками и вместе с баками обеззараживают в автоклаве, затем мусор сжигают[12].

 

 

2.3 Правила охраны труда и техники безопасности в подразделении серологической диагностики

 

Материал, поступивший  в отдел, до исследования хранят в  холодильнике. Нельзя оставлять его  в коридоре или других местах, доступных  для посторонних лиц.

После уборки штативов с кровью столы и стеллажи протирают 5 %-ным раствором карболовой кислоты или фламбируют при помощи зажженного факела. Упаковочный материал сжигают или обеззараживают автоклавированием.

Не разрешается  насасывать материал в пипетки ртом. Сыворотки разливают пипетками  с помощью груши или индивидуальной пипеткой Флоринского. Компоненты разливают  аппаратом Флоринского, шприцем-автоматом  или другими приборами.

После окончания  работы со столов убирают все лишнее, протирают их 5%-ным раствором  карболовой кислоты или фламбируют.

Отработанные  пробы крови заливают на ночь 5 %-ным раствором фенола, 0,5%-ным водным раствором глютекса или 4 %-ным раствором щелочи и на следующий день нагревают их до кипения.

Из дезраствора пробирки вынимают специальным черпаком и сразу же

погружают в раствор  моющих средств. Работу с 5 %-ным раствором фенола, 0,5%-ным водным раствором глютекса и 4 %-ным раствором щелочи рекомендуется проводить в резиновых перчатках.

Растворы фенола и щелочи готовят в резиновых  перчатках, защитных очках, фартуке  и нарукавниках.

После читки реакции  пробирки заливают раствором моющих средств и кипятят в течение 10-15 минут, затем их моют.

Ватные пробки от пробирок с кровью сжигают или  собирают в баки и стерилизуют  автоклавированием.

Для доставки в  лабораторию проб кожсырья используют тару, соответствующую по своим габаритам  внутреннему объему автоклава. В  этом случае пробы сразу стерилизуют  и пускают в работу.

Перекладывать пробы  в автоклав или другую тару и автоклавировать их разрешается с соблюдением следующих правил:

• автоклавирование может проводить только специально проинструктированный лаборант;
• при работе с неавтоклавированным сырьем необходимо надевать резиновые сапоги, второй халат, резиновый фартук и перчатки;
• по окончании работы резиновую спецодежду протирают раствором фенола, халат автоклавируют, перчатки кипятят;
• перекладывать неавтоклавированные пробы следует только на разостланной клеенке, которую по окончании работы аккуратно складывают и стерилизуют в автоклаве;
• тару, в которой доставлялись пробы, автоклавируют, а металлическую
• посуду фламбируют факелом или паяльной лампой.

При исследовании на лептоспироз пересев штаммов  проводят в боксе. Отработанные при  этом пипетки, пробирки и стекла погружают  в 1 %-ный раствор соляной кислоты до следующего дня и затем приступают к соответствующей обработке[5].

 

2.4 Работа по диагностике микозов и проведение микотоксикологических исследований кормов

 

Работая с микозным материалом, необходимо строго выполнять правила охраны труда и техники безопасности, установленные для работы по бактериологической диагностике.

Культуры грибов и зараженный ими материал следует автоклавировать по возможности в день окончания их исследования.

Руки дезинфицируют 3 %-ным раствором формальдегида или 0,5%-ным водным раствором глютекса и моют как можно чаще в течение рабочего дня и после окончания рабочего времени.

Для предотвращения заражения  помещений лаборатории спорами  грибов